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提高菜心真空渗入转基因效率的研究

致谢第6-9页
摘要第9-11页
Abstract第11-12页
前言第13-15页
1 文献综述:十字花科作物的农杆菌转化的研究进展第15-25页
    1.1 十字花科植物的农杆菌转化第15-19页
        1.1.1 农杆菌转化机制第15-16页
        1.1.2 叶盘转化法第16-17页
        1.1.3 农杆菌介导的原位转化法第17-19页
            1.1.3.1 种子转化法第17-18页
            1.1.3.2 分生组织转化第18页
            1.1.3.3 花器官转化第18-19页
    1.2 原位转化机理与影响真空渗入转化的因素第19-25页
        1.2.1 原位转化机理第19-20页
            1.2.1.1 转化目标第19-20页
            1.2.1.2 转化时间第20页
        1.2.2 影响原位转化的因素第20-25页
            1.2.2.1 温度第20-21页
            1.2.2.2 农杆菌菌株和植物基因型第21页
            1.2.2.3 农杆菌OD_(600)和转化介质第21-22页
            1.2.2.4 植株发育时期第22页
            1.2.2.5 渗入处理第22-25页
2 材料与方法第25-31页
    2.1 植物材料第25页
    2.2 供试菌株及质粒第25页
    2.3 培养基与溶液配制第25-26页
    2.4 药品与试剂第26页
    2.5 仪器与设备第26页
    2.6 菜心不同发育时期的处理第26页
    2.7 不同压强与渗入时间的处理第26-27页
    2.8 农杆菌不同菌液浓度的真空渗入处理第27页
    2.9 不同浓度表面活性剂Silwet L-77的处理第27页
    2.10 不同蔗糖浓度的处理第27页
    2.11 不同因素的正交设计第27页
    2.12 菌液准备与真空渗入转化处理第27-28页
    2.13 后期管理与种子收获第28页
    2.14 潮霉素(Hyg)最佳致死浓度的确定与转基因菜心T_1代种子的抗性筛选第28-29页
    2.15 转化株鉴定第29页
    2.16 数据处理与分析第29-31页
3 结果第31-47页
    3.1 载体的构建与真空渗入处理转基因苗的PCR检测第31-32页
        3.1.1 载体的构建第31页
        3.1.2 真空渗入处理转基因苗的PCR检测第31-32页
    3.2 菜心不同发育时期转化效果的比较第32-34页
    3.3 农杆菌OD_(600)对转化效果的影响第34-36页
    3.4 压强与时间对转化效果的影响第36-38页
        3.4.1 压强与时间对转化率的影响第36-38页
        3.4.2 花序浸蘸法处理菜心第38页
    3.5 不同浓度表面活性剂Silwet L-77对转化效果的影响第38-39页
    3.6 蔗糖浓度对转化效果的影响第39-41页
    3.7 最佳转化体系的确定第41-43页
    3.8 潮霉素致死浓度的确定和对转基因菜心T_1代种子的筛选第43页
    3.9 花序中不同部位的花蕾的转化效果比较第43页
    3.10 种子转化率与植株转化率的关系第43-45页
    3.11 不同杂交方式的转化率比较第45-47页
4 讨论第47-53页
    4.1 菜心发育时期对转化率的影响第47页
    4.2 菌液浓度对转化率的影响第47-48页
    4.3 压强与时间对转化事件的影响第48页
    4.4 表面活性剂Silwet L-77对转化率的影响第48页
    4.5 蔗糖在真空渗入菜心中的作用第48-49页
    4.6 转化部位与转化时间第49页
    4.7 花序浸蘸法转化菜心的可行性第49页
    4.8 转基因后代的筛选第49-50页
    4.9 提高农杆菌真空渗入转化率的措施第50-51页
    4.10 结论第51-53页
参考文献第53-57页

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