| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-26页 |
| 1.1 多糖 | 第11-18页 |
| 1.1.1 多糖概述 | 第11页 |
| 1.1.2 多糖的分析方法 | 第11-15页 |
| 1.1.2.1 多糖的含量分析方法 | 第11-12页 |
| 1.1.2.2 多糖的组分分析方法 | 第12页 |
| 1.1.2.3 多糖的结构分析方法 | 第12-13页 |
| 1.1.2.4 苯酚硫酸法的改进发展 | 第13-15页 |
| 1.1.3 多糖的提取方法 | 第15-17页 |
| 1.1.3.1 溶剂提取法 | 第15-16页 |
| 1.1.3.2 酶法提取 | 第16页 |
| 1.1.3.3 超声提取法 | 第16-17页 |
| 1.1.3.4 微波提取法 | 第17页 |
| 1.1.3.5 超滤法 | 第17页 |
| 1.1.4 多糖除蛋白方法 | 第17-18页 |
| 1.2 淫羊藿 | 第18-19页 |
| 1.2.1 多糖及其生物活性 | 第18-19页 |
| 1.2.2 黄酮类成分及其生物活性 | 第19页 |
| 1.2.3 生物碱成分及其生物活性 | 第19页 |
| 1.3 膜分离技术 | 第19-24页 |
| 1.3.1 膜分离技术简介 | 第19-20页 |
| 1.3.2 膜分离技术的分类 | 第20-21页 |
| 1.3.2.1 微滤 | 第20页 |
| 1.3.2.2 超滤 | 第20页 |
| 1.3.2.3 反渗透 | 第20-21页 |
| 1.3.2.4 纳滤 | 第21页 |
| 1.3.3 膜分离技术的分离特性 | 第21-22页 |
| 1.3.4 膜的污染与清洗 | 第22-24页 |
| 1.3.4.1 膜的污染与清洗 | 第22页 |
| 1.3.4.2 克服膜污染的措施 | 第22-23页 |
| 1.3.4.3 膜的清洗 | 第23-24页 |
| 1.3.5 膜分离技术在中药领域中的应用 | 第24页 |
| 1.4 本课题研究的根据、目的及意义 | 第24-26页 |
| 1.4.1 本课题研究的依据和目的 | 第24-25页 |
| 1.4.2 本课题的研究内容 | 第25-26页 |
| 第2章 淫羊藿多糖分析方法的研究 | 第26-33页 |
| 2.1 实验原料、试剂及仪器 | 第26页 |
| 2.2 实验方法及结果分析 | 第26-32页 |
| 2.2.1 酸水稀释方法的提出及探索 | 第26-28页 |
| 2.2.1.1 淫羊藿多糖样品液的配制 | 第26页 |
| 2.2.1.2 淫羊藿多糖的酸水稀释法研究 | 第26-27页 |
| 2.2.1.3 小结 | 第27-28页 |
| 2.2.2 相对吸收系数法研究初探 | 第28页 |
| 2.2.3 改良-差示酚硫法的研究 | 第28-31页 |
| 2.2.3.1 原理 | 第28页 |
| 2.2.3.2 改良-差示酚硫法的建立 | 第28-29页 |
| 2.2.3.3 改良-差示酚硫法的方法学研究 | 第29-31页 |
| 2.2.3.4 不同方法测定对未精制多糖样品含量测定的比较研究 | 第31页 |
| 2.2.4 不同样品中多糖含量的测定 | 第31-32页 |
| 2.3 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 膜污染克服方法的研究及淫羊藿多糖制备 | 第33-47页 |
| 3.1 实验原料、试剂及仪器 | 第33页 |
| 3.2 实验方法及结果分析 | 第33-45页 |
| 3.2.1 淫羊藿提取液的制备 | 第33页 |
| 3.2.2 膜分离前预处理方法的研究 | 第33-34页 |
| 3.2.3 微滤操作条件对膜通量影响的研究 | 第34-38页 |
| 3.2.3.1 微滤实验前膜通量的测定 | 第35页 |
| 3.2.3.2 操作条件的考察 | 第35-38页 |
| 3.2.3.3 小结 | 第38页 |
| 3.2.4 不同预处理方法降低膜污染效果的比较 | 第38页 |
| 3.2.5 变压运行方式对膜通量的影响 | 第38-40页 |
| 3.2.6 膜的清洗与保存方法研究 | 第40-43页 |
| 3.2.6.1 碱水反冲清洗膜的研究 | 第40-43页 |
| 3.2.6.2 膜的保存 | 第43页 |
| 3.2.7 淫羊藿多糖的制备 | 第43-45页 |
| 3.3 本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 淫羊藿多糖除蛋白工艺研究 | 第47-56页 |
| 4.1 实验试剂及仪器 | 第47页 |
| 4.2 实验方法及结果分析 | 第47-55页 |
| 4.2.1 蛋白质含量测定方法的建立 | 第47-48页 |
| 4.2.1.1 蛋白质标准液的制备 | 第47页 |
| 4.2.1.2 考马斯亮蓝G-250溶液的制备 | 第47页 |
| 4.2.1.3 标准曲线的绘制 | 第47-48页 |
| 4.2.1.4 样品中蛋白质含量测定 | 第48页 |
| 4.2.2 蛋白去除率的计算方法 | 第48-49页 |
| 4.2.3 多糖损失率的计算方法 | 第49页 |
| 4.2.4 多糖除蛋白方法的研究 | 第49-54页 |
| 4.2.4.1 木瓜蛋白酶法除蛋白研究 | 第49-52页 |
| 4.2.4.2 Sevag法除蛋白研究 | 第52-53页 |
| 4.2.4.3 Sevag法和木瓜蛋白酶法除蛋白效果比较 | 第53-54页 |
| 4.2.5 多糖样品除蛋白实例 | 第54-55页 |
| 4.3 本章小结 | 第55-56页 |
| 第5章 淫羊藿活性成分综合利用制备工艺的研究 | 第56-62页 |
| 5.1 实验试剂及仪器 | 第56页 |
| 5.2 生物碱成分的提取及分析 | 第56-59页 |
| 5.2.1 实验方法 | 第56-57页 |
| 5.2.1.1 提取条件 | 第56页 |
| 5.2.1.2 生物碱定性分析实验 | 第56-57页 |
| 5.2.1.3 总生物碱的含量测定 | 第57页 |
| 5.2.2 生物碱实验结果及分析 | 第57-59页 |
| 5.2.2.1 定性分析实验结果 | 第57-58页 |
| 5.2.2.2 总生物碱含量测定结果 | 第58-59页 |
| 5.3 黄酮成分的提取及分析 | 第59-61页 |
| 5.3.1 实验方法 | 第59页 |
| 5.3.1.1 提取条件 | 第59页 |
| 5.3.1.2 黄酮成分定性分析实验 | 第59页 |
| 5.3.2 黄酮成分实验结果及分析 | 第59-61页 |
| 5.3.2.1 TLC分析结果 | 第59-60页 |
| 5.3.2.2 HPLC分析结果 | 第60-61页 |
| 5.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第6章 淫羊藿多糖不同提取方法的研究 | 第62-68页 |
| 6.1 实验试剂和仪器 | 第62页 |
| 6.2 实验方法及结果分析 | 第62-67页 |
| 6.2.1 热水提取方法的研究 | 第62-65页 |
| 6.2.1.1 提取方法及多糖得率的计算 | 第62页 |
| 6.2.1.2 热水提取条件的考察 | 第62-65页 |
| 6.2.2 超声提取方法的研究 | 第65-66页 |
| 6.2.2.1 提取方法及多糖得率的计算 | 第65页 |
| 6.2.2.2 超声提取条件的考察 | 第65-66页 |
| 6.2.3 两种方法提取淫羊藿多糖结果比较 | 第66-67页 |
| 6.3 本章小结 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第76-77页 |