| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-35页 |
| 1.1. 纳米传感研究的现实意义 | 第12-13页 |
| 1.2. 电致化学发光传感技术 | 第13-20页 |
| 1.2.1. 电致化学发光的定义及技术特性 | 第13-14页 |
| 1.2.2. 经典电致化学发光体系 | 第14-16页 |
| 1.2.2.1. 鲁米诺电致化学发光 | 第14-15页 |
| 1.2.2.2. 三联吡啶钌电致化学发光体系 | 第15-16页 |
| 1.2.3. 纳米电致化发光材料及传感应用 | 第16-20页 |
| 1.2.3.1. 硅、锗量子点电致化学发光性质 | 第16-17页 |
| 1.2.3.2. 含镉半导体量子点电致化学发光与传感应用 | 第17页 |
| 1.2.3.3. 碳基量子点电致化学发光与分析应用 | 第17-20页 |
| 1.3. 层状纳米材料在化学与生物传感中应用 | 第20-34页 |
| 1.3.1. 纳米材料概述 | 第20-21页 |
| 1.3.1.1. 零维纳米材料 | 第20页 |
| 1.3.1.2. 一维纳米材料 | 第20页 |
| 1.3.1.3. 二维纳米材料 | 第20-21页 |
| 1.3.2. 新型层状纳米材料的合成 | 第21-28页 |
| 1.3.2.1. 石墨烯量子点的制备 | 第21-23页 |
| 1.3.2.2. 石墨相氮化碳纳米片(g-C_3N_4 NSs)的合成 | 第23-25页 |
| 1.3.2.3. 层状MoS_2纳米材料的合成 | 第25-28页 |
| 1.3.3. 新型层状纳米材料的传感应用 | 第28-34页 |
| 1.3.3.1. 荧光传感应用 | 第28-31页 |
| 1.3.3.2. 电化学传感应用 | 第31-33页 |
| 1.3.3.3. 电致化学发光传感应用 | 第33-34页 |
| 1.4. 本论文的研究目的和研究内容 | 第34-35页 |
| 第二章 腐殖质中的天然石墨烯量子点 | 第35-49页 |
| 2.1. 引言 | 第35-36页 |
| 2.2. 天然石墨烯量子点的表征及性质研究 | 第36-48页 |
| 2.2.1. 药品和试剂 | 第36页 |
| 2.2.2. 仪器设备 | 第36-37页 |
| 2.2.3. 成分分析 | 第37页 |
| 2.2.4. 结构表征 | 第37-39页 |
| 2.2.5. 形貌表征 | 第39-42页 |
| 2.2.6. 光谱表征 | 第42-44页 |
| 2.2.7. 电化学表征 | 第44-48页 |
| 2.3. 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 基于GQDs/亚硫酸根共反应ECL体系检测H_2O_2及葡萄糖 | 第49-61页 |
| 3.1. 引言 | 第49-50页 |
| 3.2. 材料与方法 | 第50-51页 |
| 3.2.1. 实验材料 | 第50页 |
| 3.2.2. 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.3. 单层GQDs的合成 | 第51页 |
| 3.2.4. CQDs的合成 | 第51页 |
| 3.3. 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 3.3.1. 单层GQDs的表征 | 第51-52页 |
| 3.3.2. GQDs/SO_3~(2-)体系的电致化学发光机理 | 第52-56页 |
| 3.3.3. GQDs/SO_3~(2-)电致化学发光体系和H_2O_2之间的相互作用 | 第56-59页 |
| 3.3.4. 构建基于GQDs/SO_3~(2-)/GOx电致化学发光体系的葡萄糖生物传感器 | 第59页 |
| 3.3.5. ECL反应和传感机理 | 第59-60页 |
| 3.4. 本章小结 | 第60-61页 |
| 第四章 构建基于g-C_3N_4 NSs-rGO的ECL传感系统并将其用于叶酸的检测 | 第61-76页 |
| 4.1. 引言 | 第61-64页 |
| 4.2. 实验部分 | 第64-65页 |
| 4.2.1. 化学试剂 | 第64页 |
| 4.2.2. 实验仪器 | 第64页 |
| 4.2.3. 材料制备 | 第64-65页 |
| 4.2.3.1. 制备超薄g-C_3N_4 NSs | 第64页 |
| 4.2.3.2. 制备氧化石墨烯(GO) | 第64-65页 |
| 4.2.3.3. 制备还原型氧化石墨烯(rGO) | 第65页 |
| 4.2.3.4. 制备g-C_3N_4 NSs-rGO NHs | 第65页 |
| 4.2.3.5. 制备g-C_3N_4 NSs-rGO NHs修饰的玻碳电极 | 第65页 |
| 4.3. 结果与讨论 | 第65-74页 |
| 4.3.1. g-C3N4 NSs-rGO NHs的表征 | 第65-67页 |
| 4.3.2. rGO对g-C_3N_4 NSs的ECL的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.3. 构建g-C_3N_4 NSs-rGO NHs的超稳定ECL发光界面 | 第68-69页 |
| 4.3.4. 叶酸淬灭g-C_3N_4 NSs-rGO体系的ECL | 第69-70页 |
| 4.3.5. g-C_3N_4 NSs-rGO/S_2O_8~(2-)体系ECL的淬灭机理 | 第70-72页 |
| 4.3.6. 构建叶酸ECL传感器 | 第72-74页 |
| 4.4. 本章小结 | 第74-76页 |
| 第五章 g-C_3N_4纳米片/鲁米诺复合ECL传感膜的研究及其在H_2O_2和葡萄糖检测中的应用 | 第76-87页 |
| 5.1. 引言 | 第76-77页 |
| 5.2. 实验步骤 | 第77-79页 |
| 5.2.1. 药品和试剂 | 第77-78页 |
| 5.2.2. 实验仪器 | 第78-79页 |
| 5.2.3. 配制g-C_3N_4 NSs-Luminol混合溶液 | 第79页 |
| 5.2.4. g-C_3N_4NSs-Luminol修饰玻碳电极的制备: | 第79页 |
| 5.2.5. 测试样品溶液的配制: | 第79页 |
| 5.3. 结果与讨论 | 第79-86页 |
| 5.3.1. g-C_3N_4NSs-Luminol复合膜材料的表征 | 第79-80页 |
| 5.3.2. g-C_3N_4NSs-Luminol复合膜的ECL响应特性 | 第80-82页 |
| 5.3.2.1. 扫描电位窗口的选择 | 第81-82页 |
| 5.3.2.2. 复合传感膜中g-C_3N_4 NSs和Luminol用量的选择 | 第82页 |
| 5.3.2.3. 过硫酸根浓度的选择 | 第82页 |
| 5.3.3. g-C_3N_4 NSs-Luminol复合传感膜内标ECL规一化及对测量重现性及线性影响 | 第82-84页 |
| 5.3.4. 基于g-C_3N_4 NSs-Luminol复合传感膜的H_2O_2传感器 | 第84页 |
| 5.3.5. 基于g-C_3N_4 NSs-Luminol复合传感膜的葡萄糖传感器 | 第84-86页 |
| 5.3.5.1. g-C_3N_4 NSs-Luminol/过硫酸根ECL葡萄糖传感器的原理 | 第84-85页 |
| 5.3.5.2. 酶用量与反应时间的选择 | 第85页 |
| 5.3.5.3. 葡萄糖传感器的工作曲线、线性范围和检测限 | 第85-86页 |
| 5.4. 本章小结 | 第86-87页 |
| 第六章 层状MoS_2纳米片的制备、性质表征及传感应用 | 第87-96页 |
| 6.1. 引言 | 第87-88页 |
| 6.2. 实验内容 | 第88-89页 |
| 6.2.1. 药品和试剂 | 第88页 |
| 6.2.2. 实验仪器 | 第88页 |
| 6.2.3. MoS_2纳米片的制备 | 第88-89页 |
| 6.3. MoS_2纳米片的表征及性质研究 | 第89-95页 |
| 6.3.1. MoS2纳米片的结构表征 | 第89-90页 |
| 6.3.2. MoS2纳米片的形貌表征 | 第90-91页 |
| 6.3.3. MoS2纳米片的荧光性质 | 第91-93页 |
| 6.3.4. MoS_2纳米片的ECL活性 | 第93-94页 |
| 6.3.5. 基于MoS_2纳米片的荧光性质检测水溶液中的重铬酸根 | 第94-95页 |
| 6.4. 本章小结 | 第95-96页 |
| 结论 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 个人简历 | 第109页 |
| 在学期间的研究成果及发表论文 | 第109页 |
