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产胶原酶微生物的分离鉴定及其培养优化研究

致谢第5-6页
摘要第6-7页
ABSTRACT第7-8页
第一章 绪论第14-21页
    1.1 胶原蛋白第14-17页
        1.1.1 概述第14页
        1.1.2 胶原蛋白的应用第14-16页
            1.1.2.1 胶原蛋白在化妆品中的应用第14-15页
            1.1.2.2 胶原蛋白在食品中的应用第15页
            1.1.2.3 胶原蛋白在生物医学中的应用第15-16页
            1.1.2.4 胶原蛋白在其他方面的应用第16页
        1.1.3 水解胶原蛋白第16-17页
    1.2 胶原蛋白水解酶第17-19页
        1.2.1 概述第17页
        1.2.2 酶来源的选择第17页
        1.2.3 胶原酶的应用第17-19页
            1.2.3.1 在医学方面的应用第18页
            1.2.3.2 在日常食用品行业的应用第18-19页
            1.2.3.3 在其他领域的应用第19页
    1.3 选题的目的和意义第19-20页
    1.4 主要研究内容第20-21页
第二章 胶原酶生产菌的筛选第21-31页
    2.1 引言第21页
    2.2 材料准备第21页
        2.2.1 材料与试剂第21页
        2.2.2 仪器与设备第21页
    2.3 菌株筛选第21-22页
        2.3.1 菌属鉴定第22页
        2.3.2 发酵优化第22页
    2.4 胶原酶活力的测定第22-23页
    2.5 结果与分析第23-30页
        2.5.1 胶原酶产生菌筛选第23页
        2.5.2 菌属鉴定第23-25页
        2.5.3 培养组分优化第25-27页
        2.5.4 培养条件优化第27-29页
        2.5.5 产胶原酶的培养曲线第29-30页
    2.6 本章小结第30-31页
第三章 海马肠道分离菌- BACILLUS SP. HS17的特性研究第31-41页
    3.1 引言第31页
    3.2 菌株HS17产淀粉酶试验第31-32页
        3.2.1 试验材料第31页
        3.2.2 试验方法第31-32页
    3.3 菌株HS17产蛋白酶试验第32页
        3.3.1 试验材料第32页
        3.3.2 试验方法第32页
    3.4 菌株HS17产纤维素酶试验第32-33页
        3.4.1 试验材料第32页
        3.4.2 试验方法第32-33页
        3.4.3 试验结果第33页
        3.4.4 结果分析第33页
    3.5 菌株HS17产壳聚糖酶试验第33-34页
        3.5.1 试验材料第33-34页
        3.5.2 试验方法第34页
        3.5.3 试验结果第34页
    3.6 菌株HS17产胶原蛋白酶试验第34-35页
        3.6.1 试验材料第34页
        3.6.2 试验方法第34页
        3.6.3 试验结果第34-35页
    3.7 菌株HS17的耐酸能力试验第35-36页
        3.7.1 试验材料第35页
        3.7.2 试验方法第35页
        3.7.3 试验结果第35-36页
    3.8 菌株HS17的耐热能力试验第36-37页
        3.8.1 试验材料第36页
        3.8.2 试验方法第36页
        3.8.3 试验结果第36-37页
    3.9 菌株HS17对海马养殖病原菌、人畜共患菌和植物病原菌的抑菌特性第37-39页
        3.9.1 试验材料与方法第37-38页
        3.9.2 试验结果第38-39页
    3.10 本章小结第39-41页
第四章 BACILLUS SP. HS17生产胶原蛋白酶的发酵组分优化第41-56页
    4.1 引言第41页
    4.2 材料与方法第41-42页
        4.2.1 材料第41-42页
        4.2.2 酶活测定方法第42页
    4.3 结果与分析第42-55页
        4.3.1 标准曲线第42-43页
        4.3.2 碳源对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第43页
        4.3.3 氮源对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第43-45页
        4.3.4 金属盐对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第45页
        4.3.5 影响胶原酶产量的显著因素的确定第45-47页
        4.3.6 爬坡试验确定中心位点第47-48页
        4.3.7 中心组合设计与响应面分析第48-55页
            4.3.7.1 中心组合设计与产酶结果第48-49页
            4.3.7.2 回归模型的方差分析第49-51页
            4.3.7.3 因素之间的交互作用分析第51-53页
            4.3.7.4 回归模型的验证第53-54页
            4.3.7.5 发酵培养曲线第54-55页
    4.4 本章小结第55-56页
第五章 BACILLUS SP. HS17生产胶原蛋白酶的发酵条件优化第56-67页
    5.1 引言第56页
    5.2 材料与方法第56-57页
    5.3 结果与分析第57-66页
        5.3.1 接种量对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第57页
        5.3.2 培养温度对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第57-58页
        5.3.3 初始pH对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第58页
        5.3.4 装液量对Bacillus sp. HS17产胶原酶的影响第58-59页
        5.3.5 中心组合设计与响应面分析第59-65页
            5.3.5.1 中心组合设计与产酶结果第60-61页
            5.3.5.2 回归模型的方差分析第61-62页
            5.3.5.3 因素之间的交互作用分析第62-64页
            5.3.5.4 回归模型的验证第64-65页
        5.3.6 发酵罐(10 L)培养HS17生产胶原蛋白酶第65-66页
    5.4 本章小结第66-67页
第六章 鱼皮胶原蛋白多肽的酶法制备工艺第67-75页
    6.1 引言第67页
    6.2 材料与方法第67-69页
        6.2.1 材料与试剂第67页
        6.2.2 研究方法第67-69页
            6.2.2.1 鱼皮胶原蛋白的制备第67-68页
            6.2.2.2 鱼皮胶原蛋白多肽的酶法制备工艺的优化第68页
            6.2.2.3 优化指标的测定方法第68页
            6.2.2.4 标准曲线的制作第68页
            6.2.2.5 酶解样品组的水解度测定第68页
            6.2.2.6 酶解胶原蛋白的薄层层析(TLC)第68-69页
    6.3 结果与讨论第69-74页
        6.3.1 鳕鱼皮胶原蛋白制备第69页
        6.3.2 酶解效率的初步分析—薄层层析(TLC)第69-70页
        6.3.3 反应温度对催化效率的影响第70页
        6.3.4 体系pH对催化效率的影响.第70-71页
        6.3.5 投料比对催化效率的影响第71-72页
        6.3.6 离子强度对催化效率的影响第72页
        6.3.7 正交试验优化胶原蛋白多肽的最适酶解条件第72-73页
        6.3.8 反应时间对催化效率的应用第73-74页
    6.4 本章小结第74-75页
第七章 主要结论及分析第75-77页
    7.1 试验结果总结及分析第75-76页
    7.2 展望第76-77页
参考文献第77-83页
攻读硕士学位期间取得的科研成果第83页

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