| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第17-23页 |
| 1.1 引言 | 第17页 |
| 1.2 微生物多糖 | 第17-18页 |
| 1.2.1 微生物多糖的来源与分类 | 第17页 |
| 1.2.2 微生物多糖的性质与结构 | 第17-18页 |
| 1.3 红曲多糖 | 第18-21页 |
| 1.3.1 红曲霉简介 | 第18-19页 |
| 1.3.2 红曲多糖的组成与结构 | 第19页 |
| 1.3.3 红曲多糖的理化性质 | 第19-20页 |
| 1.3.4 红曲多糖的生物学活性 | 第20页 |
| 1.3.5 红曲霉诱变提高红曲多糖产量的研究 | 第20页 |
| 1.3.6 红曲多糖发酵工艺优化的研究 | 第20-21页 |
| 1.3.7 红曲多糖提取工艺优化的研究 | 第21页 |
| 1.4 本论文的研究内容及意义 | 第21-23页 |
| 第2章 红曲霉生长特性与多酶特性的初步研究 | 第23-33页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-25页 |
| 2.2.1 主要仪器与设备 | 第23页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.3 出发菌株 | 第24页 |
| 2.2.4 培养基 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 形态学观察 | 第25页 |
| 2.3.2 粗酶液制备 | 第25页 |
| 2.3.3 淀粉酶的测定 | 第25页 |
| 2.3.4 蛋白酶的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.5 酯化酶的测定 | 第26页 |
| 2.3.6 纤维素酶的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.7 温度对红曲霉产酶的影响 | 第27页 |
| 2.3.8 pH对红曲霉产酶的影响 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 2.4.1 形态学观察 | 第27-28页 |
| 2.4.2 红曲霉生长曲线与残糖曲线的测定与分析 | 第28页 |
| 2.4.3 红曲霉发酵过程中桔霉素的检测 | 第28-29页 |
| 2.4.4 红曲霉产淀粉酶与纤维素酶的测定与分析 | 第29-30页 |
| 2.4.5 红曲霉产蛋白酶的测定与分析 | 第30页 |
| 2.4.6 红曲霉产酯化酶的测定与分析 | 第30-31页 |
| 2.4.7 温度对红曲霉产酶的影响 | 第31页 |
| 2.4.8 pH对红曲霉产酶的影响 | 第31-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 紫外等离子体复合诱变红曲霉产胞外多糖 | 第33-44页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2.1 主要仪器与设备 | 第33-34页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第34页 |
| 3.2.3 出发菌株 | 第34页 |
| 3.2.4 培养基 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.3.1 菌种选育路线 | 第34页 |
| 3.3.2 培养方法 | 第34-35页 |
| 3.3.3 苯酚硫酸法测定红曲霉胞外多糖产量 | 第35页 |
| 3.3.4 诱变方法 | 第35-36页 |
| 3.3.5 红曲霉诱变菌株与原始菌株产胞外多糖曲线的测定 | 第36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.4.1 苯酚硫酸法标准曲线 | 第36-37页 |
| 3.4.2 紫外(UV)诱变 | 第37-38页 |
| 3.4.3 等离子体(ARTP)诱变 | 第38-40页 |
| 3.4.4 紫外-等离子体复合诱变 | 第40-41页 |
| 3.4.5 红曲霉诱变菌株与原始菌株产胞外多糖曲线的测定 | 第41-42页 |
| 3.4.6 紫外-等离子体复合诱变红曲霉产胞外多糖的相关讨论 | 第42页 |
| 3.5 本章小结 | 第42-44页 |
| 第4章 微波超声协同辅助提取红曲多糖的工艺优化及分析 | 第44-56页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.2.1 主要仪器与设备 | 第44-45页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第45页 |
| 4.2.3 出发菌株 | 第45页 |
| 4.2.4 培养基 | 第45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.3.1 工艺路线 | 第45页 |
| 4.3.2 红曲霉的活化与培养 | 第45页 |
| 4.3.3 红曲多糖的提取与测定 | 第45页 |
| 4.3.4 醇沉时间对多糖提取量的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.5 醇沉比例对多糖提取量的影响 | 第46页 |
| 4.3.6 水浴浸提法的正交实验优化 | 第46页 |
| 4.3.7 微波辅助提取对多糖提取量的影响 | 第46页 |
| 4.3.8 超声辅助提取对多糖提取量的影响 | 第46页 |
| 4.3.9 微波超声协同辅助提取的Box-Behnken试验设计 | 第46-47页 |
| 4.3.10 提取后红曲霉菌丝体扫描电镜分析 | 第47页 |
| 4.4 结果和讨论 | 第47-55页 |
| 4.4.1 醇沉时间对多糖提取量的影响 | 第47页 |
| 4.4.2 醇沉比例对多糖提取量的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.3 水浴浸提法的正交实验优化 | 第48页 |
| 4.4.4 微波辅助提取对多糖提取量的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.5 超声辅助提取对多糖提取量的影响 | 第49页 |
| 4.4.6 微波超声协同辅助提取的Box-Behnken试验设计结果 | 第49-51页 |
| 4.4.7 微波超声协同提取因素间的交互作用分析 | 第51-53页 |
| 4.4.8 微波超声协同提取红曲多糖的扫描电镜分析及原理探讨 | 第53-55页 |
| 4.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第5章 红曲霉产多糖培养基及培养条件的优化 | 第56-66页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 实验材料 | 第56-57页 |
| 5.2.1 主要仪器与设备 | 第56页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第56-57页 |
| 5.2.3 出发菌株 | 第57页 |
| 5.2.4 培养基 | 第57页 |
| 5.3 实验方法 | 第57-59页 |
| 5.3.1 红曲霉的活化与培养 | 第57页 |
| 5.3.2 红曲多糖的提取与测定 | 第57页 |
| 5.3.3 不同碳源对红曲霉产多糖的影响 | 第57-58页 |
| 5.3.4 不同氮源对红曲霉产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.5 初始pH对红曲霉产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.6 培养温度对红曲发酵产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.7 载液量对红曲霉产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.8 接种量对红曲霉产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.9 摇床转速对红曲霉产多糖的影响 | 第58页 |
| 5.3.10 培养条件的正交实验设计 | 第58-59页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第59-65页 |
| 5.4.1 不同碳源对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第59-60页 |
| 5.4.2 不同氮源对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第60-61页 |
| 5.4.3 初始pH对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第61页 |
| 5.4.4 培养温度对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第61-62页 |
| 5.4.5 载液量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第62-63页 |
| 5.4.6 接种量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第63页 |
| 5.4.7 摇床转速对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第63-64页 |
| 5.4.8 培养条件的正交实验设计 | 第64-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第6章 其他因素对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第66-78页 |
| 6.1 引言 | 第66页 |
| 6.2 实验材料 | 第66-67页 |
| 6.2.1 主要仪器与设备 | 第66页 |
| 6.2.2 主要试剂 | 第66-67页 |
| 6.2.3 出发菌株 | 第67页 |
| 6.2.4 培养基 | 第67页 |
| 6.3 实验方法 | 第67-68页 |
| 6.3.1 红曲霉的活化与培养 | 第67页 |
| 6.3.2 红曲霉胞外多糖的的提取与测定 | 第67页 |
| 6.3.3 茶叶对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第67-68页 |
| 6.3.4 金属离子对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第68页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第68-77页 |
| 6.4.1 茶叶对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第68-70页 |
| 6.4.1.1 茶叶粉、茶叶浸提液、茶叶渣对红曲霉产胞外多糖的影响 | 第69页 |
| 6.4.1.2 茶多糖、茶多酚、咖啡碱对红曲霉产胞外多糖的影响 | 第69-70页 |
| 6.4.1.3 茶多酚最佳添加量的确定 | 第70页 |
| 6.4.2 金属离子对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第70-77页 |
| 6.4.2.1 不同金属离子对红曲霉产多糖的影响 | 第70-76页 |
| 6.4.2.1.1 Na~+添加量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第70-71页 |
| 6.4.2.1.2 Mg~(2+)对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第71页 |
| 6.4.2.1.3 Al~(3+)添加量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第71-72页 |
| 6.4.2.1.4 K~+对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第72页 |
| 6.4.2.1.5 Ca~(2+)对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第72-73页 |
| 6.4.2.1.6 Mn~(2+)添加量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第73页 |
| 6.4.2.1.7 Fe~(3+)对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第73-74页 |
| 6.4.2.1.8 Cu~(2+)添加量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第74页 |
| 6.4.2.1.9 Zn~(2+)对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第74-75页 |
| 6.4.2.1.10 Ba~(2+)添加量对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第75页 |
| 6.4.2.1.11 Pb~(2+)对红曲霉发酵产多糖的影响 | 第75-76页 |
| 6.4.2.2 金属离子液的正交实验优化 | 第76-77页 |
| 6.5 本章小结 | 第77-78页 |
| 第7章 红曲霉胞外多糖与菌丝体多糖的纯化及组成分析 | 第78-94页 |
| 7.1 引言 | 第78页 |
| 7.2 实验材料 | 第78-80页 |
| 7.2.1 主要仪器与设备 | 第78-79页 |
| 7.2.2 主要试剂 | 第79页 |
| 7.2.3 出发菌株 | 第79页 |
| 7.2.4 培养基 | 第79-80页 |
| 7.3 实验方法 | 第80-82页 |
| 7.3.1 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的提取与测定 | 第80页 |
| 7.3.2 蛋白质标准曲线的制作及样品蛋白质含量的测定 | 第80页 |
| 7.3.3 葡萄糖标准曲线的制作及样品还原糖含量的测定 | 第80页 |
| 7.3.4 脱蛋白方法的选择 | 第80-81页 |
| 7.3.5 脱色素方法的选择 | 第81页 |
| 7.3.6 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的紫外可见光谱分析 | 第81页 |
| 7.3.7 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖红外光谱分析 | 第81-82页 |
| 7.3.8 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的GC-MS单糖组成分析 | 第82页 |
| 7.3.9 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的离子交换柱分级纯化 | 第82页 |
| 7.4 结果与讨论 | 第82-92页 |
| 7.4.1 蛋白质标准曲线 | 第82-83页 |
| 7.4.2 葡萄糖标准曲线 | 第83页 |
| 7.4.3 红曲霉胞外粗多糖与菌丝体粗多糖成分的初步分析 | 第83页 |
| 7.4.4 脱蛋白方法结果与分析 | 第83-85页 |
| 7.4.5 脱色素方法结果与分析 | 第85-86页 |
| 7.4.6 纯化前后红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的紫外光谱分析 | 第86-87页 |
| 7.4.7 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的红外光谱分析 | 第87-88页 |
| 7.4.8 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的单糖组成分析 | 第88-90页 |
| 7.4.9 红曲霉胞外多糖及菌丝体多糖的离子交换柱分级纯化 | 第90-92页 |
| 7.5 小结 | 第92-94页 |
| 第8章 结论与展望 | 第94-97页 |
| 8.1 结论 | 第94-96页 |
| 8.2 展望 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-102页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
