中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略词表 | 第7-11页 |
第一章 前言 | 第11-23页 |
1.1 独脚金内酯的结构与来源 | 第11-12页 |
1.2 独脚金内酯的功能 | 第12-13页 |
1.3 独脚金内酯合成通路的研究进展 | 第13-15页 |
1.4 独脚金内酯的转运 | 第15-16页 |
1.5 独脚金内酯信号通路的研究进展 | 第16-18页 |
1.6 独脚金内酯与生长素信号通路的交联 | 第18-20页 |
1.7 独脚金内酯的抗旱研究现状 | 第20-21页 |
1.8 SMXL基因家族的研究现状 | 第21-22页 |
1.9 本实验的意义 | 第22-23页 |
第二章 实验材料和方法 | 第23-31页 |
2.1 实验材料与器材 | 第23页 |
2.1.1 突变体材料 | 第23页 |
2.1.2 实验仪器 | 第23页 |
2.2 试剂与缓冲液的配制 | 第23-25页 |
2.2.1 MS培养基 | 第23页 |
2.2.2 DNA提取缓冲液 | 第23页 |
2.2.3 Hogland培养液 | 第23-24页 |
2.2.4 0.5×TBE缓冲液 | 第24页 |
2.2.5 1%的琼脂糖胶 | 第24页 |
2.2.6 DEPC水 | 第24页 |
2.2.7 各种激素的配制 | 第24-25页 |
2.3 实验方法 | 第25-31页 |
2.3.1 拟南芥的培养 | 第25页 |
2.3.2 突变体的引物设计 | 第25-26页 |
2.3.3 突变体的鉴定 | 第26-27页 |
2.3.4 双突变体的构建 | 第27页 |
2.3.5 突变体表型观察 | 第27-28页 |
2.3.6 激素处理的相关实验 | 第28页 |
2.3.7 干旱处理 | 第28页 |
2.3.8 叶片水分含量测定 | 第28页 |
2.3.9 气孔密度和气孔指数的测量 | 第28页 |
2.3.10 激光共聚焦观察生长素含量与位置 | 第28-29页 |
2.3.11 实时定量PCR | 第29-31页 |
第三章 实验结果 | 第31-46页 |
3.1 SMXL4基因的突变能够部分恢复max2-1 的表型 | 第31-34页 |
3.2 突变体smxl4具有生长素缺陷的表型 | 第34-35页 |
3.3 突变体smxl4对人工合成的独脚金内酯GR24敏感 | 第35-37页 |
3.4 独脚金内酯合成基因与信号转导标签基因的表达分析 | 第37-39页 |
3.5 SMXL家族基因的表达分析 | 第39-40页 |
3.6 smxl4max2-1 双突变体突变体对干旱高度敏感 | 第40-41页 |
3.7 smxl4和smxl4max2-1 双突变体的气孔指数显著升高 | 第41-43页 |
3.8 smxl4和smxl4max2-1 双突变体对ABA高度敏感 | 第43-44页 |
3.9 干旱胁迫基因的表达分析 | 第44-46页 |
第四章 讨论 | 第46-50页 |
4.1 SMXL4可能是独脚金内酯信号通路中的抑制子 | 第46-47页 |
4.2 SMXL3、SMXL4与SMXL5存在功能冗余性 | 第47页 |
4.3 SMXL4通过调控生长素运输及分布影响植物发育 | 第47-48页 |
4.4 独脚金内酯和SMXL4参与干旱胁迫的调控 | 第48-50页 |
第五章 结论与展望 | 第50-51页 |
5.1 结论 | 第50页 |
5.2 展望 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
在学期间的研究成果 | 第56-57页 |
致谢 | 第57页 |