摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
缩略语表 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-27页 |
1.1 大鼠肝脏的结构与神经支配 | 第12-18页 |
1.1.1 大鼠肝脏的结构与功能 | 第12-14页 |
1.1.2 大鼠肝周神经分布及其对肝脏的调节 | 第14页 |
1.1.3 大鼠肝内神经分布及其对肝脏的调节 | 第14-15页 |
1.1.4 肝迷走神经的作用 | 第15-18页 |
1.2 大鼠肝再生及相关基因研究现状 | 第18-24页 |
1.2.1 大鼠肝再生研究现状 | 第18-20页 |
1.2.2 Gadd45g的研究现状 | 第20-23页 |
1.2.3 Nox4的研究现状 | 第23-24页 |
1.3 去迷走神经与肝再生关系研究 | 第24-26页 |
1.3.1 去迷走神经肝再生模型的建立 | 第24-25页 |
1.3.2 肝迷走神经与肝组织再生 | 第25-26页 |
1.4 本研究的目的意义 | 第26-27页 |
第二章 材料与方法 | 第27-39页 |
2.1 材料 | 第27-28页 |
2.1.1 实验动物 | 第27页 |
2.1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
2.1.3 主要手术器材 | 第28页 |
2.1.4 主要仪器 | 第28页 |
2.2 动物模型的制备 | 第28-30页 |
2.2.1 术前准备 | 第28-29页 |
2.2.2 大鼠 2/3 肝切除模型的建立 | 第29页 |
2.2.3 大鼠去迷走神经肝再生模型的建立 | 第29页 |
2.2.4 术后管理 | 第29-30页 |
2.3 动物分组与取材 | 第30页 |
2.4 免疫组化法检测Gadd45g和Nox4的表达 | 第30-32页 |
2.4.1 石蜡包埋、制片 | 第30-31页 |
2.4.2 免疫组化法检测Gadd45g的表达 | 第31页 |
2.4.3 免疫组化法检测Nox4的表达 | 第31-32页 |
2.5 Western Blot检测Gadd45g和Nox4的表达 | 第32-35页 |
2.5.1 样品制备 | 第32-33页 |
2.5.2 蛋白含量测定 | 第33页 |
2.5.3 样品分装与制备 | 第33-34页 |
2.5.4 SDS-PAGE电泳 | 第34页 |
2.5.5 转膜 | 第34-35页 |
2.5.6 封闭 | 第35页 |
2.5.7 一抗孵育 | 第35页 |
2.5.8 二抗孵育 | 第35页 |
2.5.9 显色 | 第35页 |
2.6 RT-PCR检测Gadd45g和Nox4的表达 | 第35-38页 |
2.6.1 动物取材 | 第35页 |
2.6.2 总RNA提取与纯化 | 第35-36页 |
2.6.6 c DNA合成与纯化 | 第36-37页 |
2.6.7. Real-time PCR引物设计 | 第37页 |
2.6.8. 实时荧光定量PCR反应 | 第37-38页 |
2.6.9. 电泳 | 第38页 |
2.6.10 实验结果处理 | 第38页 |
2.7 统计学处理 | 第38-39页 |
第三章 结果 | 第39-48页 |
3.1 去迷走神经再生肝中Gadd45g的表达 | 第39-43页 |
3.1.1 免疫组化法检测去迷走神经再生肝中Gadd45g蛋白的表达 | 第39-40页 |
3.1.2 Western Blot法检测去迷走神经再生肝中Gadd45g蛋白表达 | 第40-41页 |
3.1.3 RT-PCR法检测去迷走神经再生肝中Gadd45g m RNA的表达 | 第41-43页 |
3.2 去迷走神经再生肝中Nox4的表达 | 第43-48页 |
3.2.1 免疫组化法检测去迷走神经再生肝中Nox4蛋白表达 | 第43-44页 |
3.2.2 Western Blot法检测去迷走神经再生肝中Nox4蛋白表达 | 第44-45页 |
3.2.3 RT-PCR法检测去迷走神经再生肝中Nox4 m RNA的表达 | 第45-48页 |
第四章 讨论 | 第48-55页 |
4.1 去迷走神经对大鼠再生肝中Gadd45g表达的影响 | 第48-51页 |
4.2 去迷走神经对大鼠再生肝中Nox4表达的影响 | 第51-55页 |
第五章 结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-66页 |
附录 | 第66-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第71-72页 |