| 第一篇 文献综述 | 第11-39页 |
| 一.植物抗旱机理 | 第11-33页 |
| (一)水分胁迫与渗透调节 | 第12-18页 |
| 1.K~+与植物耐旱性 | 第12-13页 |
| 2.脯氨酸与植物耐旱性 | 第13-16页 |
| 3.甜菜碱与植物耐旱性 | 第16-18页 |
| 4.可溶性糖和可溶性蛋白与植物耐旱性 | 第18页 |
| (二)水分胁迫下的活性氧伤害与植物的抗氧化防御系统 | 第18-20页 |
| (三)胚胎发育晚期丰富表达蛋白(LEA 蛋白) | 第20-24页 |
| (四)植物水孔蛋白及其生理功能 | 第24-33页 |
| 1.水孔蛋白的发现 | 第24-25页 |
| 2.水孔蛋白的结构和运输水分的机理 | 第25-26页 |
| 3.水孔蛋白的分布和含量 | 第26-27页 |
| 4.水孔蛋白的分类 | 第27-28页 |
| 5.水孔蛋白的调控 | 第28-30页 |
| 6.水孔蛋白的生理功能 | 第30-31页 |
| 7.水孔蛋白的研究方法和技术 | 第31-33页 |
| 二.高粱抗旱机理研究及与玉米等作物比较 | 第33-38页 |
| (一)形态抗性 | 第34-35页 |
| (二)水分胁迫下的渗透调节 | 第35-37页 |
| (三)光合作用 | 第37-38页 |
| 三.结束语 | 第38-39页 |
| 第二篇 研究论文 | 第39-70页 |
| 第一章 高粱、玉米苗期耐旱生理机制的比较研究 | 第39-47页 |
| 引言 | 第39-40页 |
| 1.材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 植物材料及培养 | 第40页 |
| 1.2 实验处理 | 第40页 |
| 1.3 测定方法 | 第40-41页 |
| 1.3.1 水分胁迫下高粱、玉米苗期水分状况比较 | 第40页 |
| 1.3.2 水分胁迫下高粱、玉米苗期膜伤害比较 | 第40页 |
| 1.3.3 水分胁迫下高粱、玉米苗期渗透调节机制的比较 | 第40-41页 |
| 1.3.4 水分胁迫下高粱、玉米苗期抗氧化防御体系的比较 | 第41页 |
| 2.结果与分析 | 第41-44页 |
| 2.1 水分胁迫下高粱、玉米苗期水分状况及膜伤害比较 | 第41页 |
| 2.2 水分胁迫下高粱、玉米苗期渗透调节和抗氧化的比较 | 第41-44页 |
| 3.讨论 | 第44-47页 |
| 第二章 水孔蛋白 PIP1 在玉米幼苗叶片伸长生长和抗旱中的作用 | 第47-56页 |
| 引言 | 第47页 |
| 1.材料与方法 | 第47-50页 |
| 1.1 植物材料和培养 | 第47-48页 |
| 1.2 质膜水孔蛋白 PIP1 多肽抗体的制备和纯化 | 第48页 |
| 1.3 质膜的提取和制备 | 第48页 |
| 1.4 Western blotting | 第48页 |
| 1.5 in situ Western | 第48-49页 |
| 1.6 质膜 PIP1 基因兼并引物和 UBI 内标的设计和合成 | 第49页 |
| 1.7 RT-PCR | 第49-50页 |
| 1.7.1 总RNA的提取 | 第49页 |
| 1.7.2. RNA纯度检测 | 第49页 |
| 1.7.3.反转录 | 第49-50页 |
| 1.7.4.PCR | 第50页 |
| 1.8 水分胁迫处理 | 第50页 |
| 1.8.1 植物叶片伸长生长实验所用材料的水分胁迫处理 | 第50页 |
| 1.8.2 RT-PCR 和 Western blotting 实验所用材料的水分胁迫处理 | 第50页 |
| 1.9 离体实验材料的处理方法 | 第50页 |
| 2.结果与分析 | 第50-54页 |
| 3.讨论 | 第54-56页 |
| 第三章 水孔蛋白 PIP1 在高粱幼苗叶片伸长生长和抗旱中的作用 | 第56-63页 |
| 引言 | 第56页 |
| 1.材料与方法 | 第56-59页 |
| 1.1 植物材料和培养 | 第56-57页 |
| 1.2 质膜水孔蛋白 PIP1 多肽抗体的制备和纯化 | 第57页 |
| 1.3 质膜的提取和制备 | 第57页 |
| 1.4 Western blotting | 第57页 |
| 1.5 质膜 PIP1 基因兼并引物和 UBI 内标的设计和合成 | 第57-58页 |
| 1.6 RT-PCR | 第58-59页 |
| 1.6.1 总RNA 的提取 | 第58页 |
| 1.6.2. RNA纯度检测 | 第58页 |
| 1.6.3.反转录 | 第58页 |
| 1.6.4.PCR | 第58-59页 |
| 1.7 水分胁迫处理 | 第59页 |
| 1.7.1 植物叶片伸长生长实验所用材料的水分胁迫处理 | 第59页 |
| 1.7.2 RT-PCR 和 Western blotting 实验所用材料的水分胁迫处理 | 第59页 |
| 2.结果与分析 | 第59-62页 |
| 2.1 高粱叶片 CK 和 5%PEG24h 处理伸长生长速率的测定 | 第59-60页 |
| 2.2 高粱叶片质膜中 PIP1 水孔蛋白的表达 | 第60-62页 |
| 3.讨论 | 第62-63页 |
| 第四章 高粱与玉米幼苗在水孔蛋白抗旱机制上的比较 | 第63-69页 |
| 引言 | 第63页 |
| 1.材料与方法 | 第63-66页 |
| 1.1 植物材料和培养 | 第63-64页 |
| 1.2 质膜水孔蛋白 PIP1 多肽抗体的制备和纯化 | 第64页 |
| 1.3 质膜的提取和制备 | 第64页 |
| 1.4 Western blotting | 第64页 |
| 1.5 质膜 PIP1 基因兼并引物和 UBI 内标的设计和合成 | 第64-65页 |
| 1.6 RT-PCR | 第65-66页 |
| 1.6.1 总RNA 的提取 | 第65页 |
| 1.6.2. RNA纯度检测 | 第65页 |
| 1.6.3.反转录 | 第65页 |
| 1.6.4.PCR | 第65-66页 |
| 1.7 水分胁迫处理 | 第66页 |
| 1.7.1 植物叶片伸长生长实验所用材料的水分胁迫处理 | 第66页 |
| 1.7.2 RT-PCR 和 Western blotting 实验所用材料的水分胁迫处理 | 第66页 |
| 2.结果与分析 | 第66-68页 |
| 3.讨论 | 第68-69页 |
| 第五章 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 个人简历 | 第83-85页 |
| 附录 质膜水孔蛋白 PIP 在不同抗冷性水稻中的基因表达和抗冷性关系 | 第85-94页 |
| 引言 | 第85-86页 |
| 1.材料与方法 | 第86-88页 |
| 1.1 实验材料 | 第86页 |
| 1.2 低温处理 | 第86页 |
| 1.3 real-time RT-PCR | 第86-87页 |
| 1.3.1 水稻总 RNA 的提取 | 第86页 |
| 1.3.2 RNA 纯度和降解度检测 | 第86-87页 |
| 1.3.3 反转录 | 第87页 |
| 1.3.4 real-time PCR | 第87页 |
| 1.4 水稻中花 11 转 RWC3 基因 S35 株系和野生型 WT 的部分生理指标测定 | 第87-88页 |
| 1.4.1 叶片绝对含水量的测定 | 第87页 |
| 1.4.2 累积蒸腾速率的测定 | 第87页 |
| 1.4.3 根系水导度的测定 | 第87-88页 |
| 2.结果与分析 | 第88-91页 |
| 2.1 不同冷处理条件下 PIP 在不同抗冷性水稻品种秋分(Q)和统一(T)shoot 和 root的 real-time RT-PCR 基因表达测定和比较 | 第88-90页 |
| 2.2水稻中花11转RWC3基因S35株系和野生型WT的部分生理指标测定和比较 | 第90-91页 |
| 3.讨论 | 第91-93页 |
| 4.参考文献 | 第93-94页 |
