| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-17页 |
| 缩略词语一览表 | 第17-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-37页 |
| 1.1 C_(60)的性质与自由基活性 | 第19-22页 |
| 1.1.1 C_(60)“吸收”自由基 | 第19页 |
| 1.1.2 C_(60)“释放”氧自由基 | 第19-21页 |
| 1.1.3 C_(60)“催化”氧自由基产生 | 第21-22页 |
| 1.2 水溶性C_(60)与活性氧自由基 | 第22-23页 |
| 1.3 纳米晶体颗粒nC_(60)的形成与性质 | 第23-29页 |
| 1.3.1 C_(60)进入水环境中的途径 | 第24-26页 |
| 1.3.2 nC_(60)在水环境中的形成及晶体性质 | 第26-27页 |
| 1.3.3 nC_(60)在水环境中的迁移转化 | 第27-28页 |
| 1.3.4 nC_(60)在水中的光化学性质 | 第28-29页 |
| 1.4 ROS相关的n C_(60)生物效应 | 第29-32页 |
| 1.5 研究内容与意义 | 第32-37页 |
| 1.5.1 研究目的与意义 | 第32-33页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第33-35页 |
| 1.5.3 关键研究技术与方法 | 第35-36页 |
| 1.5.4 技术路线 | 第36-37页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第37-56页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第37-39页 |
| 2.1.1 实验试剂与材料 | 第37-39页 |
| 2.1.2 实验仪器与设备 | 第39页 |
| 2.2 实验方法 | 第39-56页 |
| 2.2.1 连续搅动法制备nC_(60) | 第39-41页 |
| 2.2.2 不同水体成分对nC_(60)的影响 | 第41-45页 |
| 2.2.3 nC_(60)的定量 | 第45-48页 |
| 2.2.3.1 C_(60)的萃取 | 第45-47页 |
| 2.2.3.2 C_(60)浓度测定 | 第47-48页 |
| 2.2.4 nC_(60)的表征 | 第48-53页 |
| 2.2.4.1 非对称流场流仪耦合静态光散射(AF4-MALS)表征nC_(60)的粒径分布 | 第48-52页 |
| 2.2.4.2 nC_(60)的表面电荷测定 | 第52页 |
| 2.2.4.3 nC_(60)的形貌表征 | 第52页 |
| 2.2.4.4 nC_(60)的紫外可见吸收光谱测定 | 第52-53页 |
| 2.2.5 氧自由基检测体系建立 | 第53-56页 |
| 2.2.5.1 超氧阴离子自由基的检测 | 第53页 |
| 2.2.5.2 羟基自由基的检测 | 第53-54页 |
| 2.2.5.3 单线态氧的检测 | 第54页 |
| 2.2.5.4 电子自旋共振波谱检测氧自由基 | 第54-56页 |
| 第三章 nC_(60)纳米晶体颗粒在水环境中的形成机制 | 第56-75页 |
| 3.1 引言 | 第56-57页 |
| 3.2 nC_(60)的制备及形成机制 | 第57-63页 |
| 3.2.1 AF4-MALS系统分析nC_(60)粒径分布 | 第57-59页 |
| 3.2.2 C_(60)初始尺寸对nC_(60)形成的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.3 nC_(60)形成过程中粒径分布的变化 | 第60-61页 |
| 3.2.4 nC_(60)形成前后的形貌变化 | 第61-63页 |
| 3.3 水体成分对nC_(60)形成的影响 | 第63-73页 |
| 3.3.1 pH值对n C_(60)形成的影响 | 第63-65页 |
| 3.3.2 离子强度对nC_(60)形成的影响 | 第65-67页 |
| 3.3.3 人工双亲物质—表面活性剂对nC_(60)形成的影响 | 第67-70页 |
| 3.3.4 腐殖质对nC_(60)形成的影响 | 第70-72页 |
| 3.3.5 悬浮固体对nC_(60)形成的影响 | 第72-73页 |
| 3.4 小结 | 第73-75页 |
| 第四章 nC_(60)纳米晶体颗粒释放氧自由基的机制 | 第75-90页 |
| 4.1 引言 | 第75-76页 |
| 4.2 nC_(60)水悬液中无氧自由基产生 | 第76-77页 |
| 4.3 人工双亲物质诱导nC_(60)释放氧自由基 | 第77-86页 |
| 4.3.1 表面活性剂对nC_(60)释放氧自由基能力的影响 | 第77-79页 |
| 4.3.2 TX100对n C_(60)释放氧自由基能力的影响 | 第79-83页 |
| 4.3.2.1 nC_(60)在形成过程中，TX100对氧自由基产生的影响 | 第79-80页 |
| 4.3.2.2 nC_(60)形成后再引入TX100，对氧自由基产生的影响 | 第80-81页 |
| 4.3.2.3 pH值对nC_(60)/TX100介导氧自由基产生能力的影响 | 第81-83页 |
| 4.3.3 TX100诱导nC_(60)产生氧自由基的机制探讨 | 第83-86页 |
| 4.3.3.1 nC_(60)/TX100的荧光光谱分析 | 第83-84页 |
| 4.3.3.2 nC_(60)/TX100的红外光谱分析 | 第84-85页 |
| 4.3.3.3 nC_(60)/TX100的表形分析 | 第85-86页 |
| 4.4 nC_(60)与人工生物膜——卵磷脂囊泡作用后释放氧自由基 | 第86-88页 |
| 4.4.1 nC_(60)/vesicles的表征 | 第86-87页 |
| 4.4.2 nC_(60)/vesicles体系的氧自由基检测 | 第87-88页 |
| 4.5 小结 | 第88-90页 |
| 第五章 nC_(60)对几种氧自由基产生过程的作用 | 第90-114页 |
| 5.1 引言 | 第90-91页 |
| 5.2 nC_(60)对H_2O_2/UV体系的催化作用 | 第91-100页 |
| 5.2.1 H_2O_2/UV体系的建立 | 第91-92页 |
| 5.2.2 nC_(60)催化H_2O_2氧化IC的反应 | 第92-95页 |
| 5.2.3 IC/H_2O_2体系中氧自由基鉴定 | 第95-100页 |
| 5.3 nC_(60)与羟基自由基的作用机制探讨 | 第100-102页 |
| 5.3.1 nC_(60)对H_2O_2/UV体系产生羟基自由基的影响 | 第100-102页 |
| 5.3.2 pCBA检测羟基自由基 | 第102页 |
| 5.4 nC_(60)与超氧自由基的作用机制探讨 | 第102-110页 |
| 5.4.1 X-XOD-Luminol体系建立 | 第102-105页 |
| 5.4.2 nC_(60)对黄嘌呤-黄嘌呤氧化酶体系产生超氧自由基的影响 | 第105-107页 |
| 5.4.3 VB2-NBT体系建立 | 第107-108页 |
| 5.4.4 nC_(60)对核黄素光照产生超氧自由基的影响 | 第108-110页 |
| 5.5 nC_(60)与单线态氧的作用机制探讨 | 第110-112页 |
| 5.5.1 VB2-FFA体系建立 | 第110-111页 |
| 5.5.2 nC_(60)对核黄素光照产生单线态氧反应的影响 | 第111页 |
| 5.5.3 nC_(60)对玫瑰红敏化产生单线态氧反应的影响 | 第111-112页 |
| 5.6 小结 | 第112-114页 |
| 第六章 nC_(60)混凝去除后氧自由基的产生及毒性 | 第114-128页 |
| 6.1 引言 | 第114-115页 |
| 6.2 nC_(60)样品的去除 | 第115-120页 |
| 6.2.1 pH值对n C_(60)去除率的影响 | 第115-117页 |
| 6.2.2 表面活性剂对nC_(60)去除率的影响 | 第117-119页 |
| 6.2.3 悬浮固体及腐殖质对nC_(60)去除率的影响 | 第119-120页 |
| 6.3 nC_(60)经混凝过滤后的残留毒性 | 第120-125页 |
| 6.3.1 nC_(60)的毒性评价 | 第120-123页 |
| 6.3.2 nC_(60)/表面活性剂样品的毒性评价 | 第123-125页 |
| 6.4 nC_(60)的毒性与氧自由基的关系 | 第125-127页 |
| 6.5 小结 | 第127-128页 |
| 第七章 结论及展望 | 第128-131页 |
| 7.1 结论 | 第128-129页 |
| 7.2 创新点 | 第129-130页 |
| 7.3 建议与展望 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-140页 |
| 致谢 | 第140-141页 |
| 攻读博士学位期间论文发表及获奖情况 | 第141-142页 |
