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β-内酰胺酶表达及其基于荧光探针的抑制剂筛选体系研究

摘要第5-6页
Abstract第6页
第一章 前言第9-23页
    1.1 β-内酰胺抗生素的发展历史第9-10页
    1.2 β-内酰胺类抗生素第10-11页
    1.3 β-内酰胺类抗生素的抗菌机制第11-13页
    1.4 β-内酰胺类抗生素的耐药性第13页
    1.5 β-内酰胺酶的发现第13-14页
    1.6 β-内酰胺酶的分类:第14-17页
    1.7 β-内酰胺酶的作用机制:第17-18页
    1.8 碳青霉烯酶的出现第18-19页
    1.9 β-内酰胺酶抑制剂第19-23页
第二章 基于已有质粒的β-内酰胺酶的表达第23-41页
    2.1 前言第23-24页
    2.2 实验材料第24-30页
    2.3 已有pBAD载体质粒蛋白的表达与纯化第30-37页
        2.3.1 E.coli Top 10感受态细胞阳性检测第30-31页
        2.3.2 pBAD-KPC-3在E.coli Top 10中的表达纯化第31-32页
        2.3.3 pBAD-KPC-3在E.coli Top 10中的表达结果第32-36页
        2.3.4 pBAD-载体蛋白在E.coli LMG194中蛋白表达第36-37页
        2.3.5 pBAD载体质粒表达总结第37页
    2.4 pET28b-SUMO-NDM-1质粒的构建第37-41页
        2.4.1 pET28b-NDM-1质粒的表达纯化第39-40页
        2.4.2 pET28b-NDM-1表达纯化结果第40页
        2.4.3 NDM-1 β-内酰胺酶表达总结第40-41页
第三章 新β-内酰胺酶的质粒构建及其表达第41-63页
    3.1 前言第41页
    3.2 实验耗材第41-42页
    3.3 新质粒的构建第42-48页
        3.3.1 目的基因的克隆第42-43页
        3.3.2 连接第43-44页
        3.3.3 将连接好的产物转化到E.coli BL21 (DE3) Rosetta感受态细胞第44页
        3.3.4 新构建pBAD载体质粒结果第44-47页
        3.3.5 新质粒构建的结果与讨论第47-48页
    3.4 新构建pBAD载体CTX-M-9质粒表达纯化第48-50页
        3.4.1 重组pBAD载体CTX-M-9小量表达第48页
        3.4.2 重组pBAD载体β-内酰胺酶大量表达第48-50页
    3.5 CTX-M-9表达表达载体的优化第50-58页
        3.5.1 载体更换后CTX-M-9小量试表达第52-54页
        3.5.2 载体更换后CTX-M-9大量表达第54-58页
        3.5.3 CTX-M-9表达载体优化后总结:第58页
    3.6 pBAD载体TEM-3、OXA-48和SHV-18的表达纯化第58-59页
        3.6.1 pBAD载体TEM-3、OXA-48和SHV-18的表达纯化结果第58-59页
    3.7 pET28b载体TEM-3、OXA-48和SHV-18的表达纯化第59-61页
        3.7.1 pET28b载体OXA-48和SHV-18试表达结果第60页
        3.7.2 pET28b载体OXA-48、SHV-18和TEM-3大量表达结果第60-61页
    3.8 新构建β-内酰胺酶质粒的表达总结第61-63页
第四章 β-内酰胺酶活性研究及其抑制剂的筛选第63-73页
    4.1 前言第63-64页
    4.2 实验材料第64-67页
        4.2.1 实验试剂及仪器同第二部分第64页
        4.2.2 实验试剂的配制:第64-67页
    4.3 β-内酰胺酶活性研究第67-68页
        4.3.1 融合标签对蛋白活性的影响第67页
        4.3.2 融合标签对蛋白活性的影响结果第67页
        4.3.3 β-内酰胺酶的活性研究第67-68页
    4.4 β-内酰胺酶抑制剂筛选体系第68-73页
        4.4.1 酶对荧光探针水解第69-70页
        4.4.2 酶抑制剂筛选体系的建立第70-73页
全文总结第73-74页
参考文献第74-80页
致谢第80-81页
附录I:攻读硕±期间发表的论文第81-82页
附录II:实验中相关简称及图片第82页

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