| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第15-30页 |
| 1 天然高分子在载体中的应用前景 | 第15页 |
| 2 天然高分子的分类 | 第15-16页 |
| 2.1 多糖 | 第15-16页 |
| 2.2 蛋白质 | 第16页 |
| 2.3 多核苷酸 | 第16页 |
| 3 天然高分子之间的自组装作用力 | 第16-18页 |
| 3.1 静电相互作用 | 第17页 |
| 3.2 疏水相互作用 | 第17页 |
| 3.3 氢键 | 第17页 |
| 3.4 空间位阻 | 第17-18页 |
| 4 影响静电自组装的因素 | 第18-21页 |
| 4.1 高分子物质比例 | 第18-19页 |
| 4.2 高分子电荷分布的影响 | 第19页 |
| 4.3 p H值的影响 | 第19-20页 |
| 4.4 离子强度的影响 | 第20页 |
| 4.5 温度的影响 | 第20-21页 |
| 5 天然高分子自组装在载体中应用 | 第21-28页 |
| 5.1 纳米凝胶 | 第21-26页 |
| 5.1.1 离子交联法制备纳米凝胶 | 第22-23页 |
| 5.1.2 静电自组装结合加热法 | 第23-24页 |
| 5.1.3 去溶剂法 | 第24-25页 |
| 5.1.4 微乳化法 | 第25-26页 |
| 5.2 乳液 | 第26-27页 |
| 5.2.1 多层乳液 | 第26-27页 |
| 5.2.2 皮克林（Pickering）乳液 | 第27页 |
| 5.3 天然多糖蛋白复合物 | 第27-28页 |
| 6 本课题研究的目的意义及创新点 | 第28-30页 |
| 6.1 研究的目的及意义 | 第28-29页 |
| 6.2 创新点 | 第29-30页 |
| 第二章 不同取代度羧甲基纤维素与溶菌酶相互作用溶液行为 | 第30-47页 |
| 1 引言 | 第30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第30-31页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第31页 |
| 2.2 Ly-CMC自组装复合物的制备 | 第31页 |
| 2.3 Ly和CMC配比对复合物浊度的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 Ly和CMC配比对Ly内源性荧光的影响 | 第32页 |
| 2.5 ζ-电位的测量 | 第32页 |
| 2.6 圆二色性光谱分析CMC对Ly高级结构的影响 | 第32页 |
| 2.7 红外光谱（FTIR）分析Ly与CMC的相互作用 | 第32-33页 |
| 2.8 p H和氯化钠对Ly-CMC复合物特性的影响 | 第33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-45页 |
| 3.1 不同Ly和CMC配比对Ly-CMC复合物特性的影响 | 第33-39页 |
| 3.1.1 不同Ly和CMC配比对Ly-CMC复合物浊度的影响 | 第33-35页 |
| 3.1.2 Ly和CMC比例对Ly-CMC 0.7, Ly-CMC 0.9 和Ly-CMC 1.2 ζ-电位的影响 | 第35-36页 |
| 3.1.3 Ly和CMC比例对Ly-CMC 0.7, Ly-CMC 0.9 和Ly-CMC 1.2 复合物中Ly内源性荧光影响 | 第36-37页 |
| 3.1.4 Ly与CMC比例对Ly高级结构的影响 | 第37-39页 |
| 3.2 红外光谱分析Ly与CMC的相互作用 | 第39-40页 |
| 3.3 p H对复合物浊度和电位的影响 | 第40-43页 |
| 3.4 氯化钠对复合物浊度和Ly内源性荧光的影响 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 第三章 溶菌酶/羧甲基纤维素对姜黄素的负载及生物活性的保护作用 | 第47-65页 |
| 1 引言 | 第47-48页 |
| 2 材料与方法 | 第48-51页 |
| 2.1 试验材料 | 第48-49页 |
| 2.2 Ly-CMC复合物负载Cur | 第49-50页 |
| 2.3 紫外和荧光光谱分析 | 第50页 |
| 2.4 圆二色谱分析 | 第50页 |
| 2.5 Ly-CMC对Cur的保护作用 | 第50-51页 |
| 2.6 统计分析 | 第51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-63页 |
| 3.1 Cur的负载 | 第51-52页 |
| 3.2 Cur的紫外-可见和荧光光谱分析 | 第52-54页 |
| 3.3 Ly的紫外-可见和荧光光谱分析 | 第54-56页 |
| 3.4 同步荧光光谱分析 | 第56-57页 |
| 3.5 结合常数分析 | 第57-59页 |
| 3.6 圆二色谱分析Cur与Ly的相互作用 | 第59-60页 |
| 3.7 Cur的保护作用 | 第60-61页 |
| 3.8 DPPH自由基清除率考察Ly-CMC对Cur抗氧化活性的影响 | 第61-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 第四章 热处理对溶菌酶－羧甲基纤维素复合物溶液行为的影响 | 第65-88页 |
| 1 引言 | 第65页 |
| 2 材料与方法 | 第65-68页 |
| 2.1 试验材料 | 第65-66页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第65-66页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第66页 |
| 2.2 Ly和CMC加热前后复合物的制备方法 | 第66页 |
| 2.3 Ly与CMC比例对COAs和NGs浊度，粒径，多分散指数（PDI）和 ζ-电位的影响 | 第66-67页 |
| 2.4 不同添加物对COAs和NGs浊度的影响 | 第67页 |
| 2.5 p H和Na Cl值对COAs和NGs特性的影响 | 第67-68页 |
| 2.5.1 p H和Na Cl值对COAs和NGs浊度的影响 | 第67页 |
| 2.5.2 p H和Na Cl值对COAs和NGs ζ-电位的影响 | 第67页 |
| 2.5.3 p H和Na Cl值对COAs和NGs中Ly的紫外光谱和内源性荧光光谱的影响 .. 532.5.4 p H和Na Cl值对COAs和NGs中Ly的圆二色性分析 | 第67-68页 |
| 2.5.4 p H 和 Na Cl 值对 COAs 和 NGs 中 Ly 的圆二色性分析 | 第68页 |
| 2.5.5 透射电镜（TEM）分析p H和Na Cl对COAs和NGs微观形貌的影响 | 第68页 |
| 3 结果与分析 | 第68-86页 |
| 3.1 不同Ly：CMC配比对COAs和NGs特性的影响 | 第68-71页 |
| 3.2 COAs和NGs作用力初步分析 | 第71-72页 |
| 3.3 p H和Na Cl对浊度的影响 | 第72-75页 |
| 3.4 p H和Na Cl对COAs和NGs中Ly的紫外吸收强度的影响 | 第75-77页 |
| 3.5 p H和Na Cl对COAs和NGs中Ly的内源性荧光强度的影响 | 第77-79页 |
| 3.6 远紫外圆二色性分析 | 第79-81页 |
| 3.7 近紫外圆二色性分析 | 第81-83页 |
| 3.8 TEM观察p H和Na Cl对COAs和NGs形貌的影响 | 第83-86页 |
| 4 讨论 | 第86-88页 |
| 第五章 溶菌酶－羧甲基纤维素纳米凝胶的制备及在药物递送系统中的应用 | 第88-105页 |
| 1 引言 | 第88-89页 |
| 2 材料与方法 | 第89-93页 |
| 2.1 试验材料 | 第89-91页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第89-90页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第90-91页 |
| 2.2 溶菌酶与羧甲基纤维素纳米凝胶（NGs）的制备及表征 | 第91页 |
| 2.3 荧光探针测定NGs的疏水区域 | 第91页 |
| 2.4 FITC标记NGs细胞成像 | 第91-92页 |
| 2.5 NGs的载药试验 | 第92页 |
| 2.6 MTX的体外缓释 | 第92页 |
| 2.7 NGs的形态观察 | 第92页 |
| 2.8 MTX-NGs的体外细胞毒性分析 | 第92-93页 |
| 2.9 统计分析 | 第93页 |
| 3 结果与分析 | 第93-104页 |
| 3.1 不同的Ly与CMC比例对NGs浊度、粒径和电位的影响 | 第93-96页 |
| 3.2 红外分析结果 | 第96页 |
| 3.3 NGs疏水区域的测定 | 第96-97页 |
| 3.4 细胞对NGs的吞噬及荧光成像 | 第97-99页 |
| 3.5 NGs的载药和缓释 | 第99-101页 |
| 3.6 NGs载药前后的形貌和粒径分布 | 第101-102页 |
| 3.7 MTX-NGs的体外细胞毒性 | 第102-104页 |
| 4 讨论 | 第104-105页 |
| 第六章 具备荧光成像和载药功能的纳米凝胶的制备 | 第105-130页 |
| 1 引言 | 第105-106页 |
| 2 材料与方法 | 第106-111页 |
| 2.1 试验材料 | 第106-108页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第106-107页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第107-108页 |
| 2.1.3 供试细胞 | 第108页 |
| 2.2 碲化镉量子点（Cd Te QDs）的制备 | 第108-109页 |
| 2.3 纳米凝胶负载QDs（QDs-NGs） | 第109页 |
| 2.4 QDs-NGs的表征 | 第109页 |
| 2.5 QDs-NGs的细胞荧光成像 | 第109-110页 |
| 2.6 QDs-NGs负载MTX及MTX的缓释 | 第110页 |
| 2.7 细胞毒性分析 | 第110-111页 |
| 2.8 统计分析 | 第111页 |
| 3 结果与分析 | 第111-128页 |
| 3.1 Cd Te量子点（QDs）的制备 | 第111-113页 |
| 3.2 NGs负载QDs（QDs-NGs）的制备 | 第113-115页 |
| 3.3 p H值对QDs-NGs特性的影响 | 第115-116页 |
| 3.4 QDs-NGs的贮藏稳定性 | 第116-117页 |
| 3.5 QDs-NGs的表面元素分析 | 第117-118页 |
| 3.6 红外分析 | 第118-119页 |
| 3.7 XRD分析 | 第119-120页 |
| 3.8 细胞荧光成像 | 第120-123页 |
| 3.9 QDs-NGs的细胞毒性分析 | 第123-124页 |
| 3.10 QDs-NGs负载MTX | 第124-126页 |
| 3.11 MTX的缓释 | 第126页 |
| 3.12 MTX-QDs-NGs的体外细胞毒性 | 第126-128页 |
| 4 讨论 | 第128-130页 |
| 第七章 结论与展望 | 第130-132页 |
| 1 结论 | 第130-131页 |
| 2 展望 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-155页 |
| 致谢 | 第155-156页 |
| 附录 | 第156-157页 |
