| 符号说明 | 第4-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第13-26页 |
| 1.1 连作障碍 | 第13页 |
| 1.2 连作障碍产生的原因 | 第13-16页 |
| 1.2.1 土壤理化性质改变 | 第14-15页 |
| 1.2.1.1 土壤养分失衡 | 第14页 |
| 1.2.1.2 土壤酸化 | 第14页 |
| 1.2.1.3 土壤盐渍化 | 第14-15页 |
| 1.2.2 土壤微生物群落结构比例失调，土壤病虫害增加 | 第15页 |
| 1.2.3 植物自毒作用 | 第15-16页 |
| 1.3 连作障碍的防治 | 第16-18页 |
| 1.3.1 合理轮作、间作、套种 | 第16页 |
| 1.3.2 合理施肥、灌溉 | 第16页 |
| 1.3.3 土壤消毒灭菌 | 第16-17页 |
| 1.3.4 生物防治 | 第17-18页 |
| 1.3.4.1 选育抗性品种和嫁接技术的应用 | 第17页 |
| 1.3.4.2 接种微生物肥 | 第17-18页 |
| 1.3.5 无土栽培法 | 第18页 |
| 1.4 植物化感作用的研究 | 第18-21页 |
| 1.4.1 化感物质 | 第18-19页 |
| 1.4.2 化感物质间的相互作用 | 第19页 |
| 1.4.3 化感物质的释放途径 | 第19-20页 |
| 1.4.4 化感作用机理 | 第20-21页 |
| 1.4.4.1 对细胞功能的影响 | 第20页 |
| 1.4.4.2 影响细胞分裂和根尖的细微结构 | 第20页 |
| 1.4.4.3 影响植物的呼吸作用和光合作用 | 第20页 |
| 1.4.4.4 影响蛋白质和核酸的合成 | 第20-21页 |
| 1.4.4.5 影响酶功能和活性 | 第21页 |
| 1.4.4.6 影响基因的表达 | 第21页 |
| 1.5 酚酸类物质对植物的影响 | 第21页 |
| 1.6 对羟基苯甲酸降解菌研究进展 | 第21-22页 |
| 1.7 转录组测序技术 | 第22-24页 |
| 1.7.1 转录组测序的原理 | 第23页 |
| 1.7.2 转录组测序的应用 | 第23-24页 |
| 1.8 本实验的研究内容、目的及意义 | 第24-26页 |
| 1.8.1 实验内容 | 第24页 |
| 1.8.2 实验目的 | 第24-25页 |
| 1.8.3 实验意义 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 培养基 | 第26页 |
| 2.1.2 幼苗准备 | 第26页 |
| 2.1.3 实验试剂和仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2.1 降解菌的分子鉴定 | 第27-29页 |
| 2.2.2 S.coelicoflavus GLY-20生长条件的优化 | 第29-30页 |
| 2.2.2.1 单因素试验 | 第29-30页 |
| 2.2.2.2 响应面分析试验 | 第30页 |
| 2.2.3 HPLC检测S. coelicoflavus GLY-20降解PHBA及代谢产物 | 第30页 |
| 2.2.4 S. coelicoflavus GLY-20在Hoagland营养液中对外源PHBA的降解情况 | 第30页 |
| 2.2.5 不同浓度S. coelicoflavus GLY-20菌剂对土壤中外源PHBA的降解情况 | 第30-31页 |
| 2.2.6 S. coelicoflavus GLY-20对黄瓜幼苗根际土外源PHBA的降解及菌株的存活量 | 第31页 |
| 2.2.7 S. coelicoflavus GLY-20对外源PHBA处理下黄瓜叶片抗氧化酶及相关指标的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.7.1 黄瓜叶片丙二醛（MDA）含量测定 | 第31页 |
| 2.2.7.2 黄瓜叶片过氧化氢（H_2O_2）含量测定 | 第31页 |
| 2.2.7.3 黄瓜叶片超氧阴离子（O_2~(.-)）含量测定 | 第31-32页 |
| 2.2.7.4 黄瓜叶片抗氧化物酶的提取及酶活性测定 | 第32页 |
| 2.2.7.5 黄瓜叶片非酶抗氧化物的提取及其含量的测定 | 第32页 |
| 2.2.8 S. coelicoflavus GLY-20对外源PHBA处理下黄瓜根际土壤酶活性的影响 | 第32页 |
| 2.2.9 抗氧化酶及其相关指标的统计数据分析 | 第32页 |
| 2.2.10 两种不同碳源培养时S. coelicoflavus GLY-20转录组测序 | 第32-35页 |
| 2.2.10.1 S. coelicoflavus GLY-20生长曲线的确定 | 第32-33页 |
| 2.2.10.2 S. coelicoflavus GLY-20RNA分离及质量检测 | 第33-34页 |
| 2.2.10.3 S. coelicoflavus GLY-20转录组测序 | 第34-35页 |
| 3 结果分析 | 第35-51页 |
| 3.1 菌株的鉴定 | 第35-37页 |
| 3.1.1 放线菌扫描电子显微镜观察 | 第35页 |
| 3.1.2 分子鉴定 | 第35-37页 |
| 3.2 S. coelicoflavus GLY-20培养条件的优化 | 第37-42页 |
| 3.2.1 单因素试验 | 第37-38页 |
| 3.2.2 响应面分析试验 | 第38-42页 |
| 3.3 HPLC检测S. coelicoflavus GLY-20降解PHBA及代谢产物 | 第42-43页 |
| 3.4 S. coelicoflavus GLY-20在Hoagland营养液中对外源PHBA降解情况 | 第43页 |
| 3.5 不同浓度S. coelicoflavus GLY-20菌剂对土壤中外源PHBA降解情况 | 第43-44页 |
| 3.6 S. coelicoflavus GLY-20 对黄瓜幼苗根际土外源PHBA的降解及菌株的存活量 | 第44-45页 |
| 3.7 S. coelicoflavus GLY-20 对外源PHBA处理下黄瓜叶片抗氧化酶及相关指标的影响 | 第45-47页 |
| 3.7.1 黄瓜叶片MDA、O_2~(.-) 及H_2O_2含量的变化 | 第45页 |
| 3.7.2 黄瓜叶片抗氧化酶及非酶抗氧化物的变化 | 第45-47页 |
| 3.8 S. coelicoflavus GLY-20对外源PHBA处理下黄瓜根际土壤酶活性的影响 | 第47页 |
| 3.9 两种不同碳源培养时S. coelicoflavus GLY-20转录组测序 | 第47-51页 |
| 3.9.1 S. coelicoflavus GLY-20的生长曲线 | 第47-48页 |
| 3.9.2 S. coelicoflavus GLY-20RNA分离及质量检测 | 第48-49页 |
| 3.9.3 S. coelicoflavus GLY-20基因表达水平分布 | 第49页 |
| 3.9.4 S. coelicoflavus GLY-20差异表达基因分布情况 | 第49-50页 |
| 3.9.5 S. coelicoflavus GLY-20差异表达基因统计情况 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第61页 |
