首页--生物科学论文--植物学论文--植物细胞遗传学论文--植物基因工程论文

水稻OsDET1基因功能研究

中文摘要第3-5页
英文摘要第5-7页
缩略词表第12-13页
1 绪论第13-25页
    1.1 引言第13页
    1.2 文献综述第13-23页
        1.2.1 DET1抑制植物光形态建成第13-15页
        1.2.2 DET1参与(GA)信号通路第15-17页
        1.2.3 DET1参与ABA信号通路第17-19页
        1.2.4 DET1参与紫外修复第19-21页
        1.2.5 DET1调控光节律性第21-23页
    1.3 研究目的和意义第23页
    1.4 主要研究内容第23-24页
    1.5 技术路线第24-25页
2 水稻OsDET1启动子启动模式研究第25-51页
    2.1 研究背景第25页
    2.2 实验材料和仪器第25页
        2.2.1 实验材料第25页
        2.2.2 载体和试剂盒第25页
    2.3 实验方法第25-37页
        2.3.1 实验材料准备和样品预处理第25-26页
        2.3.2 OsDET1时空表达模式和环境胁迫下表达模式分析第26-28页
        2.3.3 Pro::OsDET1序列扩增第28-30页
        2.3.4 OsDET1启动子Pro::OsDET1克隆第30-31页
        2.3.5 1381Z-P::OsDET1-GUS和p BI121-P::OsDET1-GUS载体构建和农杆菌转化第31-35页
        2.3.6 农杆菌介导的水稻转化第35-36页
        2.3.7 农杆菌介导的烟草遗传转化第36-37页
        2.3.8 GUS组织化学染色及显微观察第37页
    2.4 实验结果第37-48页
        2.4.1 Plant CARE分析OsDET1启动子调控元件第37-39页
        2.4.2 OsDET1基因对外界胁迫的响应。第39-41页
        2.4.3 胁迫条件下OsDET1基因的动态表达第41-42页
        2.4.4 OsDET1基因的节律性和光周期第42-44页
        2.4.5 OsDET1基因的时空表达模式第44-45页
        2.4.6 衰老诱导OsDET1基因表达第45-46页
        2.4.7 水稻OsDET1基因启动子启动GUS表达分析第46-48页
    2.5 讨论第48-51页
3 RNA-seq分析OsDET1在水稻中的功能第51-67页
    3.1 研究背景第51页
    3.2 实验材料第51页
    3.3 实验材料准备和样品预处理第51页
    3.4 实验结果第51-65页
        3.4.1 mRNA-Seq测序数据质量评估第51-52页
        3.4.2 mRNA-Seq序列与参考基因组比对分析第52-53页
        3.4.3 RNA-seq整体质量评估第53-54页
        3.4.4 基因表达水平对比第54-55页
        3.4.5 差异表达基因筛选第55-57页
        3.4.6 WT和DRI-16 差异基因GO富集第57-63页
        3.4.7 差异基因KEGG富集分析第63-65页
    3.5 讨论第65-67页
4 OsDET1互作蛋白分析第67-83页
    4.1 研究背景第67页
    4.2 材料和试剂第67页
        4.2.1 菌株和载体第67页
        4.2.2 试剂和试剂盒第67页
    4.3 实验方法和步骤第67-74页
        4.3.1 植物总RNA的提取第67页
        4.3.2 poly+ mRNA富集第67-68页
        4.3.3 酵母双杂交文库构建第68-70页
        4.3.4 对照实验第70页
        4.3.5 诱饵质粒毒性和自激活检测第70-71页
        4.3.6 酵母双杂交第71-72页
        4.3.7 酵母质粒的提取第72页
        4.3.8 酵母质粒转化大肠杆菌感受态细胞第72页
        4.3.9 小量LiAc酵母转化第72-73页
        4.3.10 BIFC载体构建和观察第73-74页
        4.3.11 转化洋葱表皮细胞第74页
        4.3.12 转化烟草表皮细胞第74页
    4.4 实验结果第74-80页
        4.4.1 酵母双杂交文库构建第74-75页
        4.4.2 pGBKT7-OsDET1载体构建和自激活和毒性检测第75-76页
        4.4.3 酵母文库筛选和酵母共转化验证第76-79页
        4.4.4 BIFC检验OsDET1和其互作蛋白在植物体内的蛋白互作第79-80页
    4.5 讨论第80-83页
5 OsDET1调控ABA信号通路和ABA生物合成第83-139页
    5.1 研究背景第83-85页
    5.2 材料和试剂第85页
        5.2.1 水稻材料第85页
        5.2.2 载体,菌株和试剂第85页
    5.3 实验步骤第85-96页
        5.3.1 OsDET1超表达载体CaMV35S-OsDET1构建第85-87页
        5.3.2 OsDET1-GFPtag融合载体CaMV35S-OsDET1-GFP构建第87-89页
        5.3.3 OsDET1 RNAi干扰载体构建第89-91页
        5.3.4 生理参数测定第91-92页
        5.3.5 ABA含量测定第92页
        5.3.6 蓝绿温和电泳第92-93页
        5.3.7 叶绿体蛋白印迹第93页
        5.3.8 水稻叶片透射电镜(TEM)第93页
        5.3.9 水稻叶片扫描电镜 (SEM)第93-94页
        5.3.10 碱煮法快速提取水稻DNA第94页
        5.3.11 叶片黑暗诱导衰老实验第94页
        5.3.12 叶片ABA诱导衰老实验第94页
        5.3.13 荧光定量PCR检测转基因植株的相关基因表达第94-95页
        5.3.14 Os05g0213500(OsPYL5)蛋白抗体制备第95-96页
    5.4 实验结果第96-133页
        5.4.1 改变OsDET1基因表达导致转基因植株多样性表型第96-99页
        5.4.2 干扰OsDET1基因表达不能延长叶片衰老第99-100页
        5.4.3 OsDET1干扰加速黑暗诱导的叶片衰老第100-102页
        5.4.4 衰老相关基因和叶绿素降解相关基因变化第102-104页
        5.4.5 OsDET1干扰导致水稻叶绿体蛋白加速降解第104-106页
        5.4.6 OsDET1 RNAi转基因植株叶绿体在黑暗诱导叶片衰老过程中加速瓦解第106-108页
        5.4.7 OsDET1干扰转基因植株在ABA诱导下加速衰老第108-110页
        5.4.8 OsDET1调控水稻内生ABA生物合成第110-112页
        5.4.9 OsDET1干扰影响转基因植株黑暗诱导情况下ABA生物合成第112-113页
        5.4.10 超表达OsDET1加速黑暗诱导的叶片衰老第113-114页
        5.4.11 超表达OsDET1影响OE-OsDET1转基因植株黑暗诱导情况下ABA生物合成第114-115页
        5.4.12 ABA对OE-OsDET1转基因植株叶片衰老的影响第115-117页
        5.4.13 OsDET1调控水稻种子萌发和幼苗形态建成第117-119页
        5.4.14 OsDET1 RNAi转基因植株表现ABA相关的矛盾表型第119-123页
        5.4.15 Os DDA1结合Os PYL和CDD复合体第123-125页
        5.4.16 OsDET1影响Os PYL5的降解第125-127页
        5.4.17 超表达OsDET1-GFP植株对ABA超敏感第127-131页
        5.4.18 OsDET1-GFP植株叶片在黑暗中加速衰老第131-132页
        5.4.19 ABA信号通路相关基因在OsDET1 RNAi转基因植株中的表达第132-133页
    5.5 讨论第133-139页
6 结论与展望第139-143页
    6.1 结论第139-140页
    6.2 研究的创新点第140-141页
    6.3 后续工作展望第141-143页
致谢第143-145页
参考文献第145-155页
附录第155-158页
    A. 作者在攻读学位期间所发表的论文目录第155页
    B. 作者在攻读学位期间授权的专利第155页
    C. 作者在攻读学位期间科研项目支撑第155-156页
    附图第156-158页

论文共158页,点击 下载论文
上一篇:美国空军军官职业教育体系研究
下一篇:中稻蓄留再生稻品种筛选与头季收获方式对再生季产量的影响