中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-18页 |
研究现状、成果 | 第13-15页 |
研究目的、方法 | 第15-18页 |
一、LPNs和iNGR-LPNs的制备及其表征 | 第18-37页 |
1.1 试剂材料和仪器 | 第18-20页 |
1.2 试验方法 | 第20-23页 |
1.2.1 DSPE-PEG-iNGR的合成 | 第20页 |
1.2.2 LPNs的制备及处方筛选 | 第20-21页 |
1.2.3 LPNs的体外表征 | 第21页 |
1.2.4 LPNs的pH敏感性实验 | 第21-22页 |
1.2.5 制剂的释放实验 | 第22-23页 |
1.2.6 LPNs的稳定性研究实验 | 第23页 |
1.2.7 统计学分析 | 第23页 |
1.3 实验结果 | 第23-32页 |
1.3.1 DSPE-PEG-iNGR的合成 | 第23-25页 |
1.3.2 LPNs的制备及处方筛选 | 第25-26页 |
1.3.3 LPNs的体外表征 | 第26-27页 |
1.3.4 LPNs的pH敏感性实验 | 第27-29页 |
1.3.5 制剂的释放实验 | 第29-31页 |
1.3.6 LPNs的稳定性研究实验 | 第31-32页 |
1.4 实验讨论 | 第32-36页 |
1.4.1 DSPE-PEG-iNGR的合成 | 第32页 |
1.4.2 LPNs的制备及处方筛选 | 第32-33页 |
1.4.3 LPNs的体外表征 | 第33页 |
1.4.4 LPNs的pH敏感性实验 | 第33-35页 |
1.4.5 制剂的释放实验 | 第35-36页 |
1.4.6 LPNs的稳定性研究实验 | 第36页 |
1.5 小结 | 第36-37页 |
二、iNGR-LPNs/DOX的细胞水平评价 | 第37-47页 |
2.1 试剂材料和仪器 | 第37-38页 |
2.2 试验方法 | 第38-41页 |
2.2.1 主要溶液的配制 | 第38页 |
2.2.2 4T1细胞的基本培养技术 | 第38-40页 |
2.2.3 细胞摄取实验 | 第40页 |
2.2.4 细胞增殖抑制实验——MTT实验 | 第40页 |
2.2.5 统计学分析 | 第40-41页 |
2.3 实验结果 | 第41-44页 |
2.3.1 流式摄取实验 | 第41-42页 |
2.3.2 细胞抑制实验——MTT实验 | 第42-44页 |
2.4 实验讨论 | 第44-46页 |
2.4.1 4T1细胞的培养 | 第44页 |
2.4.2 流式摄取实验 | 第44-45页 |
2.4.3 细胞抑制实验——MTT实验 | 第45-46页 |
2.5 小结 | 第46-47页 |
三、LPNs和iNGR-LPNs制剂体内肿瘤靶向性研究 | 第47-52页 |
3.1 试剂材料和仪器 | 第47页 |
3.2 试验方法 | 第47-49页 |
3.2.1 细胞株与实验动物的来源及小鼠模型的建立 | 第47-48页 |
3.2.2 包载DiR制剂的制备及其体外定量方法的建立 | 第48页 |
3.2.3 活体成像实验 | 第48-49页 |
3.3 实验结果 | 第49-50页 |
3.4 实验讨论 | 第50-51页 |
3.5 小结 | 第51-52页 |
四、LPNs和iNGR-LPNs的药效学和初步毒性研究 | 第52-62页 |
4.1 试剂材料和仪器 | 第52-53页 |
4.2 试验方法 | 第53-55页 |
4.2.1 细胞株与实验动物的来源及小鼠模型的建立 | 第53页 |
4.2.2 动物分组和给药方案 | 第53页 |
4.2.3 药效学实验 | 第53-54页 |
4.2.4 初步毒性评价 | 第54页 |
4.2.5 石蜡切片免疫组化实验步骤(谷歌生物科技有限公司提供) | 第54-55页 |
4.2.6 统计学分析 | 第55页 |
4.3 实验结果 | 第55-59页 |
4.3.1 抗肿瘤效果实验 | 第55-58页 |
4.3.2 制剂的初步毒性评价 | 第58-59页 |
4.4 实验讨论 | 第59-61页 |
4.4.1 抗肿瘤效果实验 | 第59-61页 |
4.4.2 制剂的初步毒性评价 | 第61页 |
4.5 小结 | 第61-62页 |
结论 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-70页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第70-71页 |
综述 | 第71-84页 |
综述参考文献 | 第80-84页 |
致谢 | 第84-86页 |
个人简历 | 第86页 |