中文摘要 | 第3-4页 |
英文摘要 | 第4页 |
英文缩略词对照表(ABBREVUATIONS) | 第5-8页 |
第一章 前言 | 第8-14页 |
技术路线图 | 第13-14页 |
第二章 材料和方法 | 第14-21页 |
2.1 材料 | 第14-15页 |
2.1.1 研究对象 | 第14页 |
2.1.2 主要仪器及试剂 | 第14-15页 |
2.1.3 实验所需试剂的配置 | 第15页 |
2.2 实验方法 | 第15-21页 |
2.2.1 细胞培养 | 第15-16页 |
2.2.2 共培养体系的建立 | 第16-17页 |
2.2.3 胃癌细胞株和人胃癌纤维母细胞形态学观察 | 第17页 |
2.2.4 流式细胞仪检测PD-L1蛋白表达率 | 第17-18页 |
2.2.5 实时荧光定量PCR(RT-PCR) | 第18-20页 |
2.2.6 统计学分析 | 第20-21页 |
第三章 结果 | 第21-31页 |
3.1 倒置显微镜观察细胞形态 | 第21-23页 |
3.1.1 倒置显微镜观察TAF | 第21-22页 |
3.1.2 共培养48小时后胃癌细胞形态 | 第22-23页 |
3.2 流式细胞仪检测PD-L1蛋白表达率 | 第23-28页 |
3.3 PCR检测PD-L1 mRNA表达 | 第28-30页 |
3.4 两种细胞间PD-L1表达的差异 | 第30-31页 |
第四章 讨论 | 第31-36页 |
第五章 结论 | 第36-37页 |
5.1 主要结论 | 第36页 |
5.2 研究展望 | 第36-37页 |
综述 | 第37-45页 |
1.1 免疫细胞中的共刺激分子 | 第38-39页 |
2.1 PD-1/PD-L1的结构,表达,信号传导及生理功能 | 第39-40页 |
3.1 PD-1/PD-L1通路参与肿瘤细胞的免疫逃逸 | 第40-42页 |
3.1.1 PD-L1促进肿瘤上皮细胞间质化 | 第41页 |
3.1.2 PD-1 促进Treg细胞的生成并加强其功能 | 第41页 |
3.1.3 PD-L1促进效应T细胞凋亡 | 第41页 |
3.1.4 PD-1 信号影响T细胞的能量代谢 | 第41-42页 |
3.1.5 诱导CLT细胞的耗竭 | 第42页 |
4.1 抗PD-1/PD-L1的临床应用 | 第42-43页 |
5.1 TAF在肿瘤微环境中的作用 | 第43-44页 |
6.1 展望 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
在校期间的科研成果 | 第51-52页 |
致谢 | 第52页 |