| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 常用中英文对照表 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-19页 |
| 1 山羊副流感病毒3型概述 | 第12页 |
| 2 CPIV3的形态特征及理化特性 | 第12页 |
| 3 CPIV3的基因组与结构蛋白特点 | 第12-14页 |
| 4 CPIV3的诊断方法 | 第14-16页 |
| 5 CPIV3疫苗研制的展望 | 第16-17页 |
| 6 单克隆抗体技术 | 第17-19页 |
| 引言 | 第19-20页 |
| 1 材料与方法 | 第20-37页 |
| 1.1 试验材料 | 第20-23页 |
| 1.1.1 毒株与细胞系 | 第20页 |
| 1.1.2 试验动物 | 第20页 |
| 1.1.3 试验相关试剂 | 第20页 |
| 1.1.4 试验主要溶液配置 | 第20-23页 |
| 1.1.5 试验用到的主要仪器设备 | 第23页 |
| 1.2 试验方法 | 第23-37页 |
| 1.2.1 CPIV3病毒培养 | 第23页 |
| 1.2.2 病毒TCID_(50)测定 | 第23-24页 |
| 1.2.3 抗原纯化 | 第24页 |
| 1.2.4 抗原鉴定 | 第24-25页 |
| 1.2.5 CPIV3单克隆抗体制备 | 第25-30页 |
| 1.2.6 杂交瘤细胞和单克隆抗体特性的鉴定 | 第30-33页 |
| 1.2.7 CPIV3阻断ELISA检测方法的建立 | 第33-35页 |
| 1.2.8 特异性试验 | 第35页 |
| 1.2.9 敏感性试验 | 第35页 |
| 1.2.10 重复性试验 | 第35页 |
| 1.2.11 阻断ELISA方法与病毒中和试验符合率 | 第35-36页 |
| 1.2.12 血凝抑制试验与病毒中和试验符合率 | 第36页 |
| 1.2.13 CPIV3阻断ELISA检测方法初步应用 | 第36-37页 |
| 2 试验结果 | 第37-53页 |
| 2.1 抗原的制备结果 | 第37-38页 |
| 2.1.1 CPIV3病毒的收获 | 第37页 |
| 2.1.2 病毒TCID_(50)的计算 | 第37页 |
| 2.1.3 纯化病毒的RT-PCR鉴定结果 | 第37-38页 |
| 2.1.4 血凝试验结果 | 第38页 |
| 2.2 单克隆抗体的制备与鉴定结果 | 第38-44页 |
| 2.2.1 间接ELISA检测方法的建立结果 | 第38页 |
| 2.2.2 免疫Balb/c小鼠的血清效价测定结果 | 第38-39页 |
| 2.2.3 单克隆抗体的制备结果 | 第39-40页 |
| 2.2.4 Western Blot结果 | 第40页 |
| 2.2.5 IFA试验结果 | 第40-41页 |
| 2.2.6 杂交瘤细胞株上清的阻断ELISA试验结果 | 第41-42页 |
| 2.2.7 杂交瘤细胞株上清和腹水的抗体效价测定结果 | 第42-43页 |
| 2.2.8 腹水的纯化结果 | 第43页 |
| 2.2.9 腹水纯化效果检测结果 | 第43-44页 |
| 2.2.10 杂交瘤细胞株分泌抗体稳定性检测结果 | 第44页 |
| 2.3 阻断ELISA反应条件的确定 | 第44-49页 |
| 2.3.1 抗原包被浓度和单克隆抗体 2E6工作浓度的优化结果 | 第44-45页 |
| 2.3.2 血清稀释度和作用时间的优化结果 | 第45-46页 |
| 2.3.3 单克隆抗体的作用时间优化结果 | 第46页 |
| 2.3.4 酶标二抗的工作浓度优化结果 | 第46-47页 |
| 2.3.5 酶标二抗的作用时间优化结果 | 第47页 |
| 2.3.6 底物作用时间优化结果 | 第47-48页 |
| 2.3.7 临界值的确定 | 第48-49页 |
| 2.3.8 CPIV3阻断ELISA反应程序确定结果 | 第49页 |
| 2.4 特异性试验结果 | 第49-50页 |
| 2.5 敏感性试验结果 | 第50页 |
| 2.6 重复性试验结果 | 第50-51页 |
| 2.7 阻断ELISA与病毒中和试验符合率结果 | 第51页 |
| 2.8 血凝抑制试验与病毒中和试验符合率结果 | 第51-52页 |
| 2.9 CPIV3阻断ELISA检测方法的初步应用结果 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-57页 |
| 全文总结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 个人简介 | 第64页 |
