| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 传统检测法和荧光探针法 | 第13-14页 |
| 1.3 荧光探针的结构 | 第14-15页 |
| 1.4 荧光探针的设计策略 | 第15-24页 |
| 1.4.1 分子内电荷转移(ICT) | 第15-17页 |
| 1.4.2 光诱导电子转移(PET) | 第17-18页 |
| 1.4.3 荧光共振能量转移(FRET) | 第18-20页 |
| 1.4.4 激发态质子转移(ESIPT) | 第20-21页 |
| 1.4.5 堆积诱导荧光(AIE) | 第21-22页 |
| 1.4.6 双重机理结合 | 第22-24页 |
| 1.5 荧光探针生物应用的要求 | 第24页 |
| 1.6 论文的选题及主要工作 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-28页 |
| 第二章 酸活化的硫醇探针及其溶酶体荧光成像 | 第28-52页 |
| 2.1 引言 | 第28-31页 |
| 2.2 QMAs和QMEs的合成 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-41页 |
| 2.3.1 QMAs的光谱性质 | 第32-33页 |
| 2.3.2 探针A-NE光谱响应的测定 | 第33-35页 |
| 2.3.3 Michael加成传感机理的实验证据 | 第35-36页 |
| 2.3.4 QMAs取代基效应 | 第36-38页 |
| 2.3.5 探针A-NE的选择性实验 | 第38-39页 |
| 2.3.6 探针A-NE的细胞成像 | 第39-41页 |
| 2.4 小结 | 第41页 |
| 2.5 实验部分 | 第41-47页 |
| 2.5.1 实验材料和方法 | 第41页 |
| 2.5.2 pKa的测量 | 第41-42页 |
| 2.5.3 速率常数的测量 | 第42页 |
| 2.5.4 MTT实验和细胞培养 | 第42页 |
| 2.5.5 细胞成像实验 | 第42页 |
| 2.5.6 探针分子合成 | 第42-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 第三章 双输入(生物硫醇/硫化氢)荧光探针及其生物成像 | 第52-70页 |
| 3.1 引言 | 第52-55页 |
| 3.2 探针分子的合成 | 第55-56页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第56-63页 |
| 3.3.1 QME-N_3对Cys和H_2S的光谱响应 | 第56-58页 |
| 3.3.2 QME-N_3对Cys和H_2S的响应机理 | 第58-59页 |
| 3.3.3 QME-N_3对硫醇/硫化氢响应的选择性 | 第59-60页 |
| 3.3.4 探针QME-N_3的AND型逻辑关系 | 第60-61页 |
| 3.3.5 探针响应前后的双光子吸收截面 | 第61页 |
| 3.3.6 QME-N_3在细胞成像中的应用 | 第61-63页 |
| 3.4 小结 | 第63页 |
| 3.5 实验部分 | 第63-67页 |
| 3.5.1 仪器和方法 | 第63页 |
| 3.5.2 样品配制 | 第63页 |
| 3.5.3 双光子截面测定 | 第63-64页 |
| 3.5.4 细胞培养和MTT实验 | 第64页 |
| 3.5.5 探针及参比物的合成 | 第64-67页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
| 第四章 新型BODIPY硒醇荧光探针及其生物成像 | 第70-86页 |
| 4.1 引言 | 第70-73页 |
| 4.2 探针分子的合成 | 第73-74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-80页 |
| 4.3.1 Sel-p1和Sel-p2对硒醇的光谱响应 | 第74-76页 |
| 4.3.2 Sel-p1和Sel-p2对硒醇的传感机理 | 第76页 |
| 4.3.3 Sel-p2对硒醇的选择性 | 第76-77页 |
| 4.3.4 Sel-p2对硒醇响应的pH效应 | 第77-78页 |
| 4.3.5 Sel-p2的细胞成像应用 | 第78-79页 |
| 4.3.6 Sel-p2的小动物荧光成像 | 第79-80页 |
| 4.4 小结 | 第80页 |
| 4.5 实验部分 | 第80-84页 |
| 4.5.1 实验仪器和方法 | 第80页 |
| 4.5.2 样品制备 | 第80-81页 |
| 4.5.3 pK_a值的测试实验 | 第81页 |
| 4.5.4 MTT实验和细胞培养 | 第81页 |
| 4.5.5 小动物实验 | 第81-82页 |
| 4.5.6 合成部分 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-86页 |
| 第五章 新型一氧化氮荧光探针及其细胞成像 | 第86-104页 |
| 5.1 引言 | 第86-89页 |
| 5.2 探针分子的合成 | 第89-90页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第90-98页 |
| 5.3.1 探针NO-a5/6对NO的光谱响应 | 第90-91页 |
| 5.3.2 探针NO-a5/6对NO的响应机理 | 第91-93页 |
| 5.3.3 探针NO-a5/6的选择性及反应pH效应 | 第93-94页 |
| 5.3.4 探针NO-a5的细胞和组织成像 | 第94-97页 |
| 5.3.5 探针NO-a6的细胞成像 | 第97-98页 |
| 5.4 小结 | 第98页 |
| 5.5 实验部分 | 第98-102页 |
| 5.5.1 实验仪器和方法 | 第98-99页 |
| 5.5.2 样品制备 | 第99页 |
| 5.5.3 pH缓冲溶液的制备 | 第99页 |
| 5.5.4 MTT实验和细胞培养 | 第99-100页 |
| 5.5.5 小鼠肝组织切片的制备和染色 | 第100页 |
| 5.5.6 探针分子的合成 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-104页 |
| 第六章 小结 | 第104-106页 |
| 附录 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
