| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 主要符号对照表 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-37页 |
| 1.1 淀粉样蛋白与相关疾病 | 第15-16页 |
| 1.2 胰岛淀粉样多肽IAPP | 第16-22页 |
| 1.2.1 II型糖尿病与IAPP的关系 | 第16-17页 |
| 1.2.2 IAPP的介绍 | 第17-22页 |
| 1.3 淀粉样多肽与磷脂膜及周围共存物质的相互作用 | 第22-27页 |
| 1.3.1 淀粉样多肽与磷脂膜的相互作用 | 第22-26页 |
| 1.3.2 共溶质对淀粉样多肽聚集的影响 | 第26-27页 |
| 1.4 IAPP与磷脂膜相互作用的研究中涉及到的研究方法 | 第27-34页 |
| 1.4.1 荧光光谱 | 第27-29页 |
| 1.4.2 原子力显微镜 | 第29-30页 |
| 1.4.3 圆二色谱 | 第30-31页 |
| 1.4.4 核磁共振波谱法 | 第31-33页 |
| 1.4.5 差示扫描量热法 | 第33-34页 |
| 1.5 本论文的研究思路和研究内容 | 第34-37页 |
| 第二章 人胰岛淀粉样多肽hIAPP在膜表面的聚集：硫酸软骨素和血清白蛋白的影响 | 第37-61页 |
| 2.1 本章引言 | 第37-38页 |
| 2.2 实验部分 | 第38-41页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第38页 |
| 2.2.2 实验样品制备 | 第38-39页 |
| 2.2.3 小单室囊泡SUVs和大单室囊泡LUVs的制备 | 第39页 |
| 2.2.4 ThT荧光实验 | 第39-40页 |
| 2.2.5 AFM实验 | 第40页 |
| 2.2.6 CD实验 | 第40-41页 |
| 2.2.7 31P-NMR实验 | 第41页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第41-59页 |
| 2.3.1 在水本体溶液中CSA和BSA对hIAPP聚集的影响 | 第41-44页 |
| 2.3.2 在磷脂膜上CSA对hIAPP聚集的影响 | 第44-51页 |
| 2.3.3 在磷脂膜上BSA对hIAPP聚集的影响 | 第51-55页 |
| 2.3.4 CSA和BSA对hIAPP在不同膜体系中聚集影响的机理探讨 | 第55-59页 |
| 2.4 本章小结 | 第59-61页 |
| 第三章 人胰岛淀粉样多肽N端区域与DPPC膜的相互作用：胆固醇的影响 | 第61-81页 |
| 3.1 引言 | 第61-62页 |
| 3.2 实验部分 | 第62-65页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 3.2.2 SUVs和LUVs的制备 | 第63页 |
| 3.2.3 肽/SUVs和肽/LUVs样品制备 | 第63页 |
| 3.2.4 DSC实验 | 第63-64页 |
| 3.2.5 NMR实验 | 第64页 |
| 3.2.6 CD实验 | 第64-65页 |
| 3.2.7 染料泄漏实验 | 第65页 |
| 3.3 实验结果 | 第65-77页 |
| 3.3.1 胆固醇对多肽-膜结合的影响 | 第65-72页 |
| 3.3.2 多肽对DPPC/胆固醇混膜分区的影响 | 第72-75页 |
| 3.3.3 胆固醇对多肽二级结构影响 | 第75-76页 |
| 3.3.4 胆固醇对多肽破坏膜的能力的影响 | 第76-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77-80页 |
| 3.5 本章小结 | 第80-81页 |
| 第四章 人胰岛淀粉样多肽N端区域与DOPC膜的相互作用：胆固醇的影响 | 第81-95页 |
| 4.1 本章引言 | 第81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第81-82页 |
| 4.2.2 肽/SUVs和肽/LUVs样品制备 | 第82页 |
| 4.2.3 NMR实验 | 第82-83页 |
| 4.2.4 CD实验 | 第83页 |
| 4.2.5 染料泄漏实验 | 第83页 |
| 4.3 实验结果 | 第83-93页 |
| 4.3.1 胆固醇对肽-膜结合的影响 | 第83-91页 |
| 4.3.2 胆固醇对多肽二级结构影响 | 第91-92页 |
| 4.3.3 胆固醇对多肽破坏膜的能力的影响 | 第92-93页 |
| 4.4 讨论 | 第93-94页 |
| 4.5 本章小结 | 第94-95页 |
| 第五章 结论和展望 | 第95-97页 |
| 参考文献 | 第97-121页 |
| 作者简介及科研成果 | 第121-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
