甜高粱F5群体的含糖量分析及高糖基因的SCAR标记
| 摘要 | 第1-5页 |
| abstract | 第5-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-16页 |
| 1.研究意义 | 第8-9页 |
| 2.国内外研究概况 | 第9-10页 |
| ·国外研究现状 | 第9-10页 |
| ·国内研究现状 | 第10页 |
| 3.甜高粱蔗糖代谢相关酶 | 第10-12页 |
| ·蔗糖磷酸合成酶 | 第10-11页 |
| ·蔗糖合成酶 | 第11页 |
| ·转化酶 | 第11-12页 |
| 4.高效液相色谱技术 | 第12-13页 |
| ·高效液相色谱概述 | 第12页 |
| ·高效液相色谱技术的应用 | 第12-13页 |
| 5.分子标记技术 | 第13-16页 |
| ·限制性片段长度多态性标记（RFLP） | 第14页 |
| ·随机扩增多态性DNA标记（RAPD） | 第14-15页 |
| ·简单重复序列标记（SSR） | 第15页 |
| ·序列特征化扩增区域标记（SCAR） | 第15-16页 |
| 第二章 甜高粱F5 群体糖含量的分析 | 第16-21页 |
| 1.材料与方法 | 第16-17页 |
| ·实验材料 | 第16页 |
| ·实验仪器 | 第16页 |
| ·实验试剂 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-17页 |
| 2.结果与分析 | 第17-20页 |
| ·甜高粱F5 叶片中可溶性总糖含量 | 第17-19页 |
| ·甜高粱F5 叶片中蔗糖含量分析 | 第19-20页 |
| 3.小结 | 第20-21页 |
| 第三章 甜高粱F5 群体SPS、SS酶活性的分析 | 第21-26页 |
| 1.材料与方法 | 第21-22页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21页 |
| ·酶提取液 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-22页 |
| 2.结果与分析 | 第22-25页 |
| ·甜高粱F5 群体叶片中SPS活性分析 | 第22-24页 |
| ·甜高粱叶片中SS活性分析 | 第24-25页 |
| 3.小结 | 第25-26页 |
| 第四章 甜高粱高糖基因的SCAR分析 | 第26-36页 |
| 1.材料与方法 | 第26-27页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·实验仪器 | 第26页 |
| ·实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.实验方法 | 第27-29页 |
| ·苗期DNA的提取 | 第27页 |
| ·DNA的检测 | 第27-28页 |
| ·近等基因池的建立 | 第28页 |
| ·RAPD-PCR反应体系及条件 | 第28页 |
| ·SCAR-PCR反应体系及条件 | 第28页 |
| ·PCR反应产物的检测 | 第28-29页 |
| ·共分离分析 | 第29页 |
| 3.结果与分析 | 第29-35页 |
| ·DNA纯度分析 | 第29-30页 |
| ·甜高粱高糖基因的RAPD-PCR分析 | 第30-32页 |
| ·甜高粱高糖基因RAPD多态性的共分离分析 | 第32-33页 |
| ·多态性标记的回收及克隆测序 | 第33-34页 |
| ·RAPD分子标记转化为SCAR标记 | 第34-35页 |
| 4.小结 | 第35-36页 |
| 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 附录Ⅰ 本文所用缩略词的中文名称 | 第41-42页 |
| 附录Ⅱ RAPD引物序列 | 第42-44页 |
| 附录Ⅲ Marker图谱 | 第44-45页 |
| 个人简历 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46页 |
