致谢 | 第1-5页 |
本研究是由以下三个项目资助完成 | 第5-9页 |
摘要 | 第9-11页 |
1 文献综述 | 第11-20页 |
·KLF15 基因的研究进展 | 第11-14页 |
·KLFs 转录因子家族 | 第11-12页 |
·KLF15 基因的起源 | 第12页 |
·KLF15 基因的结构 | 第12页 |
·KLF15 基因的组织表达特性 | 第12页 |
·KLF15 基因功能研究进展 | 第12-14页 |
·单核苷酸多态性(SNPs) | 第14-17页 |
·单核苷酸多态性简介 | 第14-15页 |
·SNP 的筛查方法 | 第15-17页 |
·荧光定量 PCR 技术 | 第17-18页 |
·嵌合荧光染料法(SYBR Green) | 第18页 |
·荧光探针法(Taqman 法) | 第18页 |
·双荧光素酶报告基因分析系统 | 第18-20页 |
·双荧光素酶报告基因分析系统简介 | 第18-19页 |
·双荧光素酶报告基因系统载体系列 | 第19-20页 |
2 引言 | 第20-21页 |
3 KLF15 基因的同源比对及鸡 KLF15 基因的组织表达规律研究 | 第21-29页 |
·试验材料 | 第21页 |
·试验样品 | 第21页 |
·主要仪器 | 第21页 |
·主要试验试剂及溶液配制 | 第21页 |
·试验方法 | 第21-24页 |
·KLF15 基因氨基酸序列的同源比对及进化树构建 | 第21-22页 |
·总 RNA 提取 | 第22页 |
·RNA 质量检测 | 第22页 |
·制备 RNA 混池 | 第22页 |
·反转录 cDNA | 第22-23页 |
·cDNA 的质量检测 | 第23页 |
·荧光定量 PCR 引物设计 | 第23页 |
·荧光定量 PCR 反应操作步骤 | 第23页 |
·数据分析 | 第23-24页 |
·结果与分析 | 第24-27页 |
·KLF15 基因的同源性分析 | 第24-26页 |
·总 RNA 提取质量检测 | 第26页 |
·cDNA 质量及引物特异性检测 | 第26-27页 |
·鸡 KLF15 基因在固始鸡不同发育阶段的组织表达规律 | 第27页 |
·讨论 | 第27-28页 |
·小结 | 第28-29页 |
4 固始鸡 X 安卡鸡 F2代资源群 KLF15 基因遗传变异研究 | 第29-41页 |
·试验材料 | 第29-30页 |
·试验动物 | 第29页 |
·试验主要试剂及溶液配制 | 第29页 |
·主要仪器 | 第29-30页 |
·试验方法 | 第30-32页 |
·鸡 KLF15 基因保守结构域预测 | 第30页 |
·基因组 DNA 的提取及混池构建 | 第30页 |
·SNPs 的功能预测 | 第30-31页 |
·酶切引物及内切酶的选择 | 第31页 |
·PCR 扩增 | 第31页 |
·PCR 产物检测 | 第31页 |
·PCR 产物的限制性酶切(PCR-RFLP) | 第31页 |
·酶切产物检测与鉴定 | 第31-32页 |
·数据处理与分析 | 第32页 |
·结果与讨论 | 第32-38页 |
·鸡 KLF15 基因保守结构域预测结果 | 第32页 |
·SNPs 筛查结果 | 第32页 |
·SNPs 的功能预测结果 | 第32-34页 |
·2-bp indel 的酶切与测序验证 | 第34页 |
·2-bp indel 基因频率和基因型频率统计 | 第34-35页 |
·2-bp indel 不同基因型与相关表型性状的关联分析 | 第35-38页 |
·讨论 | 第38-40页 |
·小结 | 第40-41页 |
5 鸡 KLF15 基因 2-bp indel 的遗传效应分析 | 第41-51页 |
·与淅川乌骨鸡群体生长性状关联分析 | 第41-42页 |
·试验动物 | 第41页 |
·试验方法 | 第41页 |
·结果 | 第41-42页 |
·不同基因型表达规律研究 | 第42-43页 |
·试验材料 | 第42页 |
·试验方法 | 第42页 |
·结果 | 第42-43页 |
·不同基因型双荧光素酶活性测定 | 第43-49页 |
·试验材料 | 第43-44页 |
·试验方法 | 第44-47页 |
·结果 | 第47-49页 |
·结果与讨论 | 第49-50页 |
·小结 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
ABSTRACT | 第57-58页 |