摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
符号说明 | 第11-12页 |
第一部分 文献综述 | 第12-26页 |
1 转C_4 pepc作物的研究进展 | 第13-14页 |
2 C_4pepc转基因的研究 | 第14-15页 |
3 高表达转玉米C_4型pepc基因水稻的生理特性 | 第15-17页 |
4 植物细胞内过氧化氢(H_2O_2)产生、清除及其所介导的信号转导 | 第17-24页 |
·植物细胞内H_2O_2产生 | 第17-20页 |
·植物细胞内H_2O_2的清除 | 第20-21页 |
·植物细胞中的H_2O_2信号转导途径研究进展 | 第21-23页 |
·植物系统获得抗性(SAR)和细胞程序化死亡(PCD) | 第21页 |
·H_2O_2参与ABA调控的气孔关闭 | 第21-22页 |
·H_2O_2参与植物生长发育 | 第22页 |
·H_2O_2相关的信号转导 | 第22-23页 |
·植物体内H_2O_2调控的基因表达 | 第23-24页 |
5 选题意义及依据 | 第24-26页 |
第二部分 外源H_2O_2对高表达转玉米C_4PEPC水稻及原种光合特性的影响 | 第26-36页 |
1 材料和方法 | 第26-27页 |
·实验材料 | 第26页 |
·处理 | 第26页 |
·净光合速率(Pn)测定 | 第26-27页 |
·数据处理 | 第27页 |
2 结果与分析 | 第27-34页 |
·供试材料的光合特性和农艺性状比较 | 第27页 |
·不同浓度外源H_2O_2处理下供试材料净光合速率(Pn)的变化 | 第27-29页 |
·不同浓度外源H_2O_2处理下供试材料气孔导度和胞间CO_2浓度的变化 | 第29-31页 |
·不同浓度外源H_2O_2处理下材料水分利用效率(WUE)随光强的变化 | 第31-32页 |
·不同浓度H_2O_2处理下光合参数的多元线性回归分析 | 第32-34页 |
3 讨论 | 第34-36页 |
第三部分 不同抑制剂对高表达转玉米C_4pepc基因水稻内源H_2O_2产生及气孔导度的影响 | 第36-50页 |
1 材料与方法 | 第36-39页 |
·药品和试剂 | 第36-37页 |
·供试材料 | 第37页 |
·抑制剂的引入 | 第37页 |
·质膜脂肪酸组分检测 | 第37-38页 |
·内源H_2O_2活体组织染色定位 | 第38页 |
·内源H_2O_2含量 | 第38页 |
·蛋白含量测定 | 第38页 |
·NADPH氧化酶活性的测定 | 第38-39页 |
·气孔导度的测定 | 第39页 |
·数据统计分析 | 第39页 |
2 结果与分析 | 第39-48页 |
·正丁醇对材料膜脂饱和度的影响 | 第39-41页 |
·不同时间处理下,ABA、BA、NS、DPI对高表达转玉米C_4pepc水稻基因内源H_2O_2生成的影响 | 第41-43页 |
·ABA、BA、NS和DPI对供试材料内源H_2O_2含量的影响以及NADPH氧化酶活性的变化 | 第43-45页 |
·ABA、BA、NS和DP对供试材料气孔导度的影响 | 第45-48页 |
3 小结与讨论 | 第48-50页 |
第四部分 内源H_2O_2对高表达转玉米C_4pepc水稻光合特性及叶绿素荧光特性的影响 | 第50-64页 |
1 材料和方法 | 第50-54页 |
·供试材料 | 第50页 |
·抑制剂的引入 | 第50-51页 |
·净光合速率测定 | 第51页 |
·叶绿素荧光测定 | 第51页 |
·PEPCase活性测定 | 第51-52页 |
·PEPC蛋白表达量 | 第52页 |
·pepc基因转录水平测定 | 第52-54页 |
·DNA及总RNA提取 | 第52-53页 |
·转录水平分析 | 第53-54页 |
·数据统计分析 | 第54页 |
2 结果与分析 | 第54-61页 |
·内源H_2O_2对高表达转玉米C_4pepc水稻表观光合速率的影响 | 第54-57页 |
·内源H_2O_2对高表达转玉米C_4pepc水稻叶绿素荧光参数的影响 | 第57-58页 |
·内源H_2O_2对高表达转玉米C_4pepc水稻PEPCase活性的影响 | 第58-59页 |
·内源H_2O_2对高表达转玉米C_4pepc水稻pepc基因转录水平和PEPC蛋白表达量的影响 | 第59-61页 |
3 讨论 | 第61-62页 |
4 小结 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-74页 |
全文总结 | 第74-76页 |
致谢 | 第76-78页 |
硕士攻读期间发表论文 | 第78页 |