| 缩写表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| Ⅰ 引言 | 第11-16页 |
| Ⅱ 材料与方法 | 第16-21页 |
| 一、植物材料 | 第16页 |
| 二、处理方法 | 第16页 |
| 1、Tc诱导处理 | 第16页 |
| 2、CaM抑制剂处理 | 第16页 |
| 三、测定方法 | 第16-20页 |
| 1、CaM的提取 | 第16-17页 |
| 2、CaM的测定 | 第17页 |
| 3、无机磷的测定 | 第17页 |
| 4、蛋白质的测定 | 第17页 |
| 5、谷胱甘肽还原酶和抗坏血酸专一性过氧化物酶的提取和测定 | 第17-18页 |
| 6、GSH／GSSG的提取和测定 | 第18页 |
| 7、ASA／DHA的提取和测定 | 第18-19页 |
| 8、半胱氨酸的提取和测定 | 第19页 |
| 9、γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ-ECS)的提取和测定 | 第19-20页 |
| 10、0-乙酰丝氨酸硫解酶的提取和测定 | 第20页 |
| 四、试剂与仪器 | 第20-21页 |
| Ⅲ 实验结果 | 第21-51页 |
| 一、诱导表达细胞质CaM活性对转基因烟草叶圆片谷胱甘肽代谢的影响 | 第21-29页 |
| 1、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24h后CaM活性的变化 | 第21-22页 |
| 2、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后谷胱甘肽含量的变化 | 第22-24页 |
| 3、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后CaM活性的变化 | 第24-27页 |
| 4、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后谷胱甘肽含量的变化 | 第27-29页 |
| 二、诱导表达细胞质CaM活性对烟草谷胱甘肽生物合成相关限制因素的影响 | 第29-39页 |
| 1、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后半胱氨酸含量的变化 | 第30-31页 |
| 2、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后半胱氨酸含量的变化 | 第31-33页 |
| 3、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后γ-ECS活性的变化 | 第33-34页 |
| 4、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后γ-ECS活性的变化 | 第34-36页 |
| 5、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后OAS-TL活性的变化 | 第36-37页 |
| 6、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后OAS-TL活性的变化 | 第37-39页 |
| 三、诱导表达细胞质CaM活性对烟草叶圆片氧化还原状态(GSH／GSSG和ASA／DHA)的调控 | 第39-51页 |
| 1、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后抗坏血酸含量的变化 | 第40-42页 |
| 2、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后抗坏血酸含量的变化 | 第42-44页 |
| 3、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后GR活性的变化 | 第44-46页 |
| 4、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后GR活性的变化 | 第46-48页 |
| 5、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导24小时后APX活性的变化 | 第48-49页 |
| 6、转基因烟草H1-1C、H1-2C经Tc诱导并施加外源CaM抑制剂处理后APX活性的变化 | 第49-51页 |
| Ⅳ 讨论 | 第51-54页 |
| 一、Tc诱导表达系统的表达渗漏问题 | 第51页 |
| 二、CaM在转基因烟草谷胱甘肽代谢中的作用 | 第51页 |
| 三、操纵细胞CaM水平对谷胱甘肽生物合成限制因素的影响 | 第51-53页 |
| 四、操纵细胞CaM水平对GSH／GSSG的调控 | 第53-54页 |
| 结束语 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
