| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-33页 |
| ·纳米技术的发展 | 第16-17页 |
| ·纳米材料的性能 | 第17-19页 |
| ·表面效应 | 第18页 |
| ·尺寸效应 | 第18-19页 |
| ·界面效应 | 第19页 |
| ·量子效应 | 第19页 |
| ·纳米金 | 第19-27页 |
| ·纳米金的合成 | 第19-22页 |
| ·Citrate还原 | 第19页 |
| ·Brust-Schiffrin方法 | 第19-20页 |
| ·其他配基 | 第20-21页 |
| ·复合纳米金属 | 第21页 |
| ·纳米金-聚合物 | 第21-22页 |
| ·Dendrimers | 第22页 |
| ·纳米金的应用 | 第22-27页 |
| ·分子识别 | 第22-23页 |
| ·DNA传感 | 第23-24页 |
| ·免疫传感 | 第24-25页 |
| ·糖传感器 | 第25页 |
| ·酶传感器 | 第25-26页 |
| ·药物检测 | 第26页 |
| ·催化 | 第26-27页 |
| ·毛细管电泳 | 第27页 |
| ·DNA损伤 | 第27-31页 |
| ·由损伤引起的DNA碱基的固有电活性的变化 | 第29-30页 |
| ·有电活性的DNA加和物 | 第30页 |
| ·DNA与小分子的非共价作用 | 第30页 |
| ·紫外光引起的DNA损伤 | 第30-31页 |
| ·本文构想 | 第31-33页 |
| 第2章 醇脱氢酶在纳米金胶修饰电极上的固定研究 | 第33-43页 |
| ·引言 | 第33-34页 |
| ·实验与材料 | 第34-35页 |
| ·试剂 | 第34页 |
| ·仪器 | 第34页 |
| ·金溶胶的制备 | 第34页 |
| ·电极的自组装 | 第34-35页 |
| ·压电石英传感器在乙醇溶液中的响应 | 第35页 |
| ·结果和讨论 | 第35-42页 |
| ·ADH在金胶修饰电极上的固定 | 第35-39页 |
| ·裸金电极和金胶修饰的金电极的循环伏安比较 | 第35-36页 |
| ·电化学阻抗法研究醇脱氢酶在裸金电极和纳米金胶修饰电极上的固定 | 第36-38页 |
| ·压电石英晶体传感器研究金胶的自组装及ADH的固定 | 第38-39页 |
| ·ADH的酶反应能力 | 第39-42页 |
| ·电化学阻抗研究ADH与NAD的结合 | 第39-40页 |
| ·压电石英传感测定ADH与NAD的结合常数 | 第40-41页 |
| ·金胶表面固定的ADH的动力学参数估算 | 第41-42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 第3章 表面活性剂对纳米金胶修饰电极的影响研究 | 第43-53页 |
| ·引言 | 第43页 |
| ·实验与材料 | 第43-44页 |
| ·试剂 | 第43-44页 |
| ·纳米金的自组装 | 第44页 |
| ·各种电极实际面积的测定 | 第44页 |
| ·表观电容的测定 | 第44页 |
| ·结果和讨论 | 第44-52页 |
| ·裸金电极、HDT修饰电极和纳米金修饰电极实际面积的比较 | 第44-46页 |
| ·裸金电极、HDT修饰电极和纳米金修饰电极表观电容的比较 | 第46页 |
| ·裸金电极、HDT修饰电极和纳米金修饰电极循环伏安图的比较 | 第46-48页 |
| ·表面活性剂对纳米金修饰电极的还原峰的影响 | 第48-50页 |
| ·电化学阻抗法研究各种表面活性剂的影响 | 第50-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 第4章 电流法研究纳米金对黄嘌呤生物传感器的影响 | 第53-64页 |
| ·引言 | 第53-54页 |
| ·实验 | 第54-55页 |
| ·结果和讨论 | 第55-63页 |
| ·PPY／XOD传感器和PPY／XOD／Au-colloid传感器对黄嘌呤的电流响应 | 第55-56页 |
| ·电压对PPY／XOD传感器和PPY／XOD／Au-colloid传感器对黄嘌呤的电流响应的影响 | 第56-58页 |
| ·PB／PPY／XOD传感器和PB／PPY／XOD／Au-colloid传感器对黄嘌呤的电流响应的影响 | 第58-60页 |
| ·电压对PB／PPY／XOD传感器和PB／PPY／XOD／Au-colloid传感器对黄嘌呤的电流响应的影响 | 第60-62页 |
| ·上述四个传感器的动力学参数估计 | 第62-63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 第5章 纳米金对辣根过氧化物酶传感器影响的研究 | 第64-78页 |
| ·引言 | 第64-65页 |
| ·实验 | 第65-66页 |
| ·试剂 | 第65页 |
| ·仪器 | 第65页 |
| ·生物传感器的构造 | 第65-66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-77页 |
| ·纳米金胶对PPY／HRP生物传感器的电化学影响 | 第66-71页 |
| ·PPY／HRP和PPY／HRP／Au-colloid生物传感器的循环伏安比较 | 第66-67页 |
| ·PPY／HRP和PPY／HRP／Au-colloid生物传感器对H_2O_2的电流响应的比较 | 第67-68页 |
| ·检测电压对PPY／HRP和PPY／HRP／Au-colloid生物传感器的电流响应的影响 | 第68-71页 |
| ·纳米金胶对PB／PPY／HRP生物传感器的电化学影响 | 第71-75页 |
| ·PB／PPY／HRP和PB／PPY／HRP／Au-colloid生物传感器的循环伏安比较 | 第71-72页 |
| ·PB／PPY／HRP和PB／PPY／HRP／Au-colloid生物传感器对H_2O_2的电流响应的比较 | 第72页 |
| ·检测电压对PB／PPY／HRP和PB／PPY／HRP／Au-colloid生物传感器的电流响应的影响 | 第72-75页 |
| ·pH对PPY／HRP和PPY／HRP／Au-colloid生物传感器的影响 | 第75页 |
| ·干扰 | 第75页 |
| ·米氏常数的计算 | 第75-77页 |
| ·小结 | 第77-78页 |
| 第6章 壳聚糖／戊二醛／半胱胺／纳米金的自组装及人血清白蛋白和橙皮甙的结合过程监测 | 第78-91页 |
| ·引言 | 第78-79页 |
| ·实验 | 第79-80页 |
| ·试剂 | 第79页 |
| ·仪器 | 第79页 |
| ·橙皮甙的纯化 | 第79-80页 |
| ·实验步骤 | 第80页 |
| ·结果与讨论 | 第80-90页 |
| ·原理 | 第80-81页 |
| ·压电传感器估测粘均分子量 | 第81-83页 |
| ·壳聚糖／戊二醛／半胱胺(CGC)／金胶体的自组装膜 | 第83-88页 |
| ·PQCI研究CGC自组装膜的形成过程 | 第83-86页 |
| ·PQCI研究胶体金在CGC膜上的固定 | 第86页 |
| ·循环伏安法和电化学阻抗法研究CGC／纳米金膜的形成 | 第86-88页 |
| ·CGC／金胶膜在HSA与橙皮甙的结合中的应用 | 第88-90页 |
| ·PQCI监测HSA在金胶体上的固定 | 第88-89页 |
| ·PQCI监测HSA与橙皮甙的结合 | 第89-90页 |
| ·重现性 | 第90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 第7章 毛细管电泳-Ru(bpy)_3~(2+)电化学发光测定咳必清 | 第91-101页 |
| ·引言 | 第91-92页 |
| ·实验 | 第92-93页 |
| ·试剂 | 第92页 |
| ·仪器 | 第92-93页 |
| ·结果与讨论 | 第93-100页 |
| ·循环伏安实验 | 第93-94页 |
| ·实验条件的优化 | 第94-96页 |
| ·施加电压 | 第94-95页 |
| ·进样高压和进样时间 | 第95页 |
| ·pH值 | 第95-96页 |
| ·纳米金对ECL光强的增强效应 | 第96-98页 |
| ·分析应用 | 第98-100页 |
| ·小结 | 第100-101页 |
| 第8章 毛细管电泳-Ru(bpy)_3~(2+)电化学发光测定扑尔敏及其与人血清白蛋白的相互作用 | 第101-111页 |
| ·引言 | 第101-102页 |
| ·实验 | 第102页 |
| ·试剂 | 第102页 |
| ·仪器 | 第102页 |
| ·实验步骤 | 第102页 |
| ·结果与讨论 | 第102-110页 |
| ·循环伏安实验 | 第102-103页 |
| ·实验条件的优化 | 第103-106页 |
| ·施加电压 | 第103-104页 |
| ·进样体积 | 第104页 |
| ·pH值 | 第104-105页 |
| ·分离电压 | 第105-106页 |
| ·分析应用 | 第106-107页 |
| ·重现性 | 第107页 |
| ·三种药物的分离 | 第107-108页 |
| ·纳米金对ECL光强的增强效应 | 第108-109页 |
| ·平衡透析实验测定扑尔敏与HSA的相互作用 | 第109-110页 |
| ·小结 | 第110-111页 |
| 第9章 压电石英阻抗技术和恒电位溶出分析研究檞皮素-铜(Ⅱ)对双链DNA的诱导损伤 | 第111-122页 |
| ·引言 | 第111-112页 |
| ·实验 | 第112-113页 |
| ·试剂 | 第112页 |
| ·仪器 | 第112-113页 |
| ·实验步骤 | 第113页 |
| ·结果与讨论 | 第113-121页 |
| ·檞皮素-Cu~(2+)体系诱导DNA损伤的PQCI图 | 第113-115页 |
| ·Cu~(2+)、檞皮素和DNA的浓度对DNA损伤的影响 | 第115-117页 |
| ·DNA损伤的恒电位溶出分析 | 第117-120页 |
| ·檞皮素-Cu~(2+)体系对DNA的诱导损伤的机理推导 | 第120-121页 |
| ·小结 | 第121-122页 |
| 第10章 DNA在纳米碳管上的检测以及甘草素-Cu(Ⅱ)对DNA的诱导损伤 | 第122-132页 |
| ·引言 | 第122-123页 |
| ·实验 | 第123-124页 |
| ·试剂 | 第123页 |
| ·甘草素的合成 | 第123-124页 |
| ·仪器 | 第124页 |
| ·实验步骤 | 第124页 |
| ·结果与讨论 | 第124-131页 |
| ·dsDNA的恒电位溶出分析 | 第124-127页 |
| ·恒电位溶出分析dsDNA损伤 | 第127-128页 |
| ·过氧化氢酶和联喹啉对dsDNA损伤的影响 | 第128-129页 |
| ·Cu(Ⅱ)和甘草素浓度的影响 | 第129-130页 |
| ·PQCI研究DNA的损伤 | 第130-131页 |
| ·小结 | 第131-132页 |
| 结论 | 第132-134页 |
| 参考文献 | 第134-160页 |
| 致谢 | 第160-161页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第161-162页 |
