| 英文缩略表 | 第1-11页 |
| 摘要 | 第11-14页 |
| 英文摘要 | 第14-17页 |
| 引言 | 第17-25页 |
| 1． 病原学 | 第18-20页 |
| 1．1 病毒分类及毒株分类 | 第18页 |
| 1．2 稳定性 | 第18-19页 |
| 1．3 核酸及蛋白质组成 | 第19页 |
| 1．4 基因组复制 | 第19-20页 |
| 1．5 宿主范围 | 第20页 |
| 2． 流行病学 | 第20-21页 |
| 2．1 病毒的传播 | 第20-21页 |
| 3． 发病机理 | 第21-22页 |
| 4． 临床及病理变化 | 第22页 |
| 4．1 病理变化 | 第22页 |
| 4．2 矮小综合征 | 第22页 |
| 4．3 慢性瘤形成 | 第22页 |
| 5． 诊断 | 第22-23页 |
| 5．1 病毒分离与鉴定 | 第22-23页 |
| 5．2 血清学检测 | 第23页 |
| 5．3 鉴别诊断 | 第23页 |
| 6． 预防和控制 | 第23-24页 |
| 7． 本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 研究内容 | 第25-75页 |
| 试验一 昆虫细胞表达的网状内皮组织增殖症病毒囊膜糖蛋白及其免疫性 | 第25-36页 |
| 1 材料和方法 | 第26-28页 |
| 1．1 材料 | 第26页 |
| 1．2 引物设计和env基因的PCR扩增 | 第26页 |
| 1．3 表达REV env基因的重组杆状病毒全基因组质粒的构建 | 第26-27页 |
| 1．4 含REV env基因的重组杆状病毒全基因组质粒NDA转染Sf9细胞 | 第27页 |
| 1．5 重组杆状病毒感染细胞中REV env基因表达的检测 | 第27-28页 |
| 1．6 env基因重组表达产物在SPF鸡的免疫反应及抗体水平的检测 | 第28页 |
| 1．7 env基因重组表达产物免疫SPF鸡后的REV病毒攻毒试验 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-32页 |
| 2．1 含REV env基因的重组供体质粒的酶切鉴定 | 第28-29页 |
| 2．2 含REV env基因重组杆状病毒全基因组质粒DNA的验证 | 第29页 |
| 2．3 表达REV env重组杆状病毒的检测 | 第29-31页 |
| 2．4 重组杆状病毒感染细胞免疫SPF鸡后抗REV抗体的检测 | 第31-32页 |
| 2．5 env基因重组表达产物免疫SPF鸡后的REV病毒攻毒试验结果 | 第32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 试验二 REV油乳苗的研究及抗REV抗体的跟踪调查 | 第36-43页 |
| 1． 材料和方法 | 第37-39页 |
| 1．1 病毒来源 | 第37页 |
| 1．2 试验动物 | 第37页 |
| 1．3 成纤维细胞(CEF)的制备 | 第37页 |
| 1．4 病毒的增殖 | 第37页 |
| 1．5 阳性细胞率的检测 | 第37-38页 |
| 1．6 REV油乳苗的制备 | 第38页 |
| 1．7 免疫试验 | 第38页 |
| 1．8 荧光检测用细胞板的制备 | 第38-39页 |
| 1．9 IFA检测抗成纤维细胞抗体 | 第39页 |
| 1．10 雏鸡攻毒试验及病毒血症的测定 | 第39页 |
| 2． 结果 | 第39-42页 |
| 2．1 A组鸡的免疫效果及抗体水平与其卵黄抗体和雏鸡母源抗体的关系 | 第40-41页 |
| 2．2 B组鸡的免疫效果及抗体水平与其卵黄抗体和雏鸡母源抗体的关系 | 第41页 |
| 2．3 IFA检测母鸡抗体、卵黄抗体和雏鸡母源抗体的结果比较 | 第41页 |
| 2．4 雏鸡攻毒试验及病毒血症的测定结果 | 第41-42页 |
| 3 结论 | 第42-43页 |
| 试验三 血清学方法比较不同REV毒株之间交叉免疫原性 | 第43-51页 |
| 1 材料及方法 | 第44-46页 |
| 1．1 病毒及其来源 | 第44页 |
| 1．2 试验动物 | 第44页 |
| 1．3 CEF的制备 | 第44页 |
| 1．4 病毒的增殖 | 第44页 |
| 1．5 病毒含量的测定 | 第44-45页 |
| 1．6 荧光检测用细胞板的制备 | 第45页 |
| 1．7 REV单因子血清的制备 | 第45页 |
| 1．8 IFA检测REV之间的交叉免疫反应 | 第45-46页 |
| 1．9 病毒交叉中和试验设计 | 第46页 |
| 2 结果 | 第46-49页 |
| 2．1 病毒培养后病毒效价的检测结果 | 第46-47页 |
| 2．2 IFA检测REV之间的交叉免疫反应结果 | 第47-48页 |
| 2．3 病毒交叉中和试验检测结果 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-51页 |
| 试验四 在隔离条件下66日龄鸡无法水平传播禽网状内皮组织增殖病病毒 | 第51-58页 |
| 1 材料与方法 | 第52-53页 |
| 1．1 病毒及其来源 | 第52页 |
| 1．2 试验动物 | 第52页 |
| 1．3 CEF的制备 | 第52页 |
| 1．4 病毒的增殖及定量 | 第52页 |
| 1．5 鸡血液中病毒效价的测定 | 第52-53页 |
| 1．6 试验设计 | 第53页 |
| 1．7 血清中抗REV抗体效价的ELISA检测 | 第53页 |
| 2 结果 | 第53-56页 |
| 2．1 鸡血液中病毒含量的测定 | 第54页 |
| 2．2 血清中抗REV抗体的ELISA检测结果 | 第54-56页 |
| 3 讨论 | 第56-58页 |
| 试验五 斑点杂交试验检测禽REV在雏鸡体内的分布 | 第58-66页 |
| 1 材料和方法 | 第59-62页 |
| 1．1 病毒来源 | 第59页 |
| 1．2 试验动物 | 第59页 |
| 1．3 成纤维细胞(CEF)的制备 | 第59页 |
| 1．4 病毒的增殖 | 第59页 |
| 1．5 病毒含量的测定 | 第59-60页 |
| 1．6 动物实验设计 | 第60页 |
| 1．7 组织 DNA的提取 | 第60页 |
| 1．8 标记探针的制备 | 第60-61页 |
| 1．9 标记探针对样品DNA的检测 | 第61-62页 |
| 2 结果 | 第62-63页 |
| 2．1 点杂交结果 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-66页 |
| 试验六 ELISA和IFA检测抗REV母源抗体滴度相关性比较 | 第66-75页 |
| 1 材料及方法 | 第66-67页 |
| 1．1 实验动物 | 第66-67页 |
| 1．2 实验设计 | 第67页 |
| 2 试验结果 | 第67-68页 |
| 2．1 ELISA和IFA测定结果相关性比较 | 第67-68页 |
| 2．2 EUSA和IFA检测血清抗体灵敏度和稳定性比较 | 第68页 |
| 2．3 对REV的母源抗体的半衰期 | 第68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
| 个人简介及硕士期间发表的学术论文目录 | 第86-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
