第一章 植物抗旱机制和抗旱基因的研究进展 | 第1-32页 |
1 干旱胁迫对植物的伤害 | 第10-12页 |
·植物生长受到抑制 | 第10-11页 |
·对光合作用的伤害 | 第11页 |
·活性氧对植物的氧化伤害 | 第11-12页 |
2 植物抗旱的生物学机制 | 第12-24页 |
·渗透调节 | 第12-16页 |
·渗透调节的意义与遗传表现 | 第12页 |
·渗透调节物质 | 第12-16页 |
·脯氨酸 | 第13-14页 |
·甜菜碱 | 第14-15页 |
·海藻糖 | 第15页 |
·果聚糖 | 第15-16页 |
·糖醇 | 第16页 |
·LEA蛋白 | 第16-22页 |
·LEA蛋白的定位及性质 | 第17页 |
·LEA蛋白的结构及分类 | 第17-19页 |
·LEA蛋白的抗旱性 | 第19-20页 |
·TaLEA_2的研究概况 | 第20-22页 |
·水孔蛋白 | 第22-23页 |
·调控抗氧化防御系统 | 第23-24页 |
3 干旱胁迫诱导基因表达调控 | 第24-29页 |
·植物细胞对干旱胁迫信号感知 | 第24-25页 |
·干旱胁迫信号的传导 | 第25-27页 |
·转录因子 | 第25-26页 |
·蛋白激酶 | 第26页 |
·磷脂酶 | 第26-27页 |
·干旱胁迫下基因的诱导和表达调控 | 第27-29页 |
·ABA依赖型基因 | 第27-28页 |
·ABA非依赖型基因 | 第28页 |
·不能被ABA诱导的基因 | 第28-29页 |
4 农杆菌介导转化法的原理和方法 | 第29-31页 |
·土壤农杆菌转化系统及转化原理 | 第29-30页 |
·农杆菌介导的基因转化方法 | 第30-31页 |
·共培养法 | 第30-31页 |
·用分离的Ti质粒直接转化原生质体 | 第31页 |
5 本研究课题的提出 | 第31-32页 |
第二章 小麦耐逆基因TaLEA_2植物表达载体的构建 | 第32-43页 |
1 实验材料 | 第32-33页 |
·质粒、菌株和抗生素 | 第32-33页 |
·酶及试剂 | 第33页 |
·培养基 | 第33页 |
2 实验方法 | 第33-38页 |
·植物表达载体pBI121-TaLEA_2的构建 | 第33-35页 |
·提质粒 | 第33-34页 |
·酶切 | 第34页 |
·酶切片断的连接 | 第34-35页 |
·感受态细胞的制备 | 第35页 |
·重组子转化E.coli DH5 α | 第35页 |
·表达载体pBI121-TaLEA_2的鉴定 | 第35-37页 |
·PCR鉴定 | 第35-36页 |
·酶切鉴定 | 第36-37页 |
·DNA序列测定 | 第37页 |
·农杆菌的转化 | 第37页 |
·农杆菌感受态细胞的制备 | 第37页 |
·转化农杆菌 | 第37页 |
·转化农杆菌的鉴定 | 第37-38页 |
3 结果 | 第38-41页 |
·pBI121-TaLEA_2的构建 | 第39页 |
·重组质粒的鉴定 | 第39-40页 |
·测序结果 | 第40-41页 |
·转化菌的鉴定 | 第41页 |
4 讨论 | 第41-43页 |
第三章 拟南芥的转化及抗旱抗盐性分析 | 第43-54页 |
1 材料和方法 | 第45-48页 |
·植物材料 | 第45页 |
·质粒和菌株 | 第45页 |
·试剂 | 第45页 |
·培养基 | 第45-46页 |
·实验方法 | 第46-48页 |
·农杆菌介导法对拟南芥转化 | 第46页 |
·真空渗透法转化 | 第46页 |
·转化后拟南芥的管理 | 第46页 |
·转基因拟南芥植株的筛选及DNA提取 | 第46-47页 |
·阳性植株的筛选 | 第46-47页 |
·拟南芥DNA的微量提取 | 第47页 |
·转基因拟南芥植株的PCR检测 | 第47-48页 |
·转基因拟南芥的抗性试验 | 第48页 |
2 结果与分析 | 第48-51页 |
·转基因拟南芥的管理 | 第48页 |
·转基因拟南芥的筛选及PER验证 | 第48-49页 |
·转化系拟南芥的抗性检测 | 第49-51页 |
3 讨论 | 第51-54页 |
·野生型拟南芥的培育 | 第51页 |
·转基因植株的阳性鉴定 | 第51-52页 |
·真空渗透转基因技术分析 | 第52页 |
·转基因拟南芥抗性分析 | 第52-54页 |
本文主要结论 | 第54页 |
本文创新之处 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第69-70页 |