| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 中英文对照表 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-22页 |
| ·菊花与非生物胁迫相关的表型 | 第12-13页 |
| ·胁迫损伤后的表型变化 | 第12-13页 |
| ·抗逆性较强的菊花品种的形态特征 | 第13页 |
| ·菊花对非生物胁迫的生理响应 | 第13-16页 |
| ·逆境造成的损伤 | 第13-14页 |
| ·膜系统损伤 | 第13-14页 |
| ·光合作用损伤 | 第14页 |
| ·其他损伤表现 | 第14页 |
| ·菊花对逆境的抵御 | 第14-16页 |
| ·保护酶活性 | 第15页 |
| ·渗透调节物质 | 第15-16页 |
| ·菊花及其近缘种响应非生物胁迫的分子机制 | 第16-17页 |
| ·植物中与非生物胁迫相关的ALDH超家族 | 第17-19页 |
| ·提高菊花抗逆性的途径 | 第19-20页 |
| ·本研究的设计思想 | 第20-21页 |
| ·研究的目的和意义 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-21页 |
| ·本研究的技术路线 | 第21-22页 |
| 2 甘菊ALDH超家族相关基因的分离与筛选 | 第22-38页 |
| ·甘菊ALDHs关键成员的分离与表达分析 | 第22-32页 |
| ·材料与方法 | 第22-24页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·试验方法 | 第22-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-30页 |
| ·甘菊ALDH各家族与不同生物间的比较 | 第24-25页 |
| ·全长序列的获得 | 第25-26页 |
| ·保守结构域分析 | 第26-27页 |
| ·系统进化分析 | 第27-29页 |
| ·不同胁迫和诱导条件下的ALDHs表达分析 | 第29-30页 |
| ·不同器官中的ALDHs表达分析 | 第30页 |
| ·小结与讨论 | 第30-32页 |
| ·甘菊ALDH超家族的特点 | 第30-31页 |
| ·甘菊ALDHs在非生物胁迫下的表达模式 | 第31-32页 |
| ·甘菊甜菜碱合成通路表达分析 | 第32-38页 |
| ·材料与方法 | 第32-33页 |
| ·植物材料和处理 | 第32页 |
| ·试验方法 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-36页 |
| ·ClCMO基因全长cDNA扩增 | 第33-34页 |
| ·ClCMO蛋白的系统进化关系分析 | 第34-35页 |
| ·ClCMO和DlBADH在甘菊不同器官中的表达 | 第35页 |
| ·ClCMO和DlBADH在胁迫和激素处理下的表达分析 | 第35-36页 |
| ·小结与讨论 | 第36-38页 |
| ·甘菊甜菜碱合成通路的表达特征 | 第36-37页 |
| ·ClCMO和DlBADH是ABA非依赖型基因 | 第37页 |
| ·DlBADH基因是甘菊响应盐诱导的关键基因 | 第37-38页 |
| 3 切花菊3个新品种再生体系的建立 | 第38-51页 |
| ·材料与方法 | 第38-41页 |
| ·试验材料 | 第38页 |
| ·试验方法 | 第38-41页 |
| ·试验设计与流程 | 第38-41页 |
| ·培养条件 | 第41页 |
| ·试验试剂 | 第41页 |
| ·数据分析方法 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-49页 |
| ·‘雪山’再生体系 | 第41-44页 |
| ·愈伤组织诱导、分化、丛生芽增殖试验结果 | 第41-42页 |
| ·带芽茎段扩繁结果 | 第42-43页 |
| ·生根试验结果 | 第43-44页 |
| ·‘雪神’再生体系 | 第44-46页 |
| ·外植体的筛选 | 第44页 |
| ·愈伤组织分化结果 | 第44-45页 |
| ·生根试验结果 | 第45-46页 |
| ·‘粉贵人’再生体系 | 第46-49页 |
| ·愈伤组织诱导、分化及丛生芽的扩繁 | 第46-47页 |
| ·带芽茎段扩繁结果 | 第47-48页 |
| ·生根试验结果 | 第48-49页 |
| ·小结与讨论 | 第49-51页 |
| ·小结 | 第49页 |
| ·菊花组织培养具有品种特异性 | 第49页 |
| ·不同外植体再生能力有差异 | 第49-50页 |
| ·植物组织培养的试验设计方法比较 | 第50-51页 |
| 4 甘菊BADH基因对切花菊‘雪山’的遗传转化 | 第51-69页 |
| ·材料与方法 | 第51-59页 |
| ·试验材料 | 第51页 |
| ·植物材料 | 第51页 |
| ·载体与菌种 | 第51页 |
| ·相关试剂 | 第51页 |
| ·植物表达载体构建方法 | 第51-56页 |
| ·酶切位点的选择和引物设计 | 第51-52页 |
| ·RNA提取及反转录 | 第52页 |
| ·DlBADH基因全长的获得 | 第52-53页 |
| ·中间载体构建 | 第53-54页 |
| ·表达载体构建 | 第54-55页 |
| ·表达载体鉴定 | 第55页 |
| ·农杆菌感受态细胞制备 | 第55页 |
| ·表达载体转化农杆菌感受态 | 第55-56页 |
| ·农杆菌转化菌体鉴定 | 第56页 |
| ·菌液的保存 | 第56页 |
| ·遗传转化体系建立方法 | 第56-58页 |
| ·转化条件的确定 | 第56-57页 |
| ·预培养 | 第57页 |
| ·侵染 | 第57-58页 |
| ·共培养 | 第58页 |
| ·延迟培养 | 第58页 |
| ·分化培养 | 第58页 |
| ·再生苗的分离与鉴定 | 第58-59页 |
| ·再生苗的分离 | 第58页 |
| ·生根筛选 | 第58-59页 |
| ·基因组DNA提取 | 第59页 |
| ·PCR鉴定 | 第59页 |
| ·结果与分析 | 第59-67页 |
| ·pBI121-BADH植物表达载体构建 | 第59-62页 |
| ·DlBADH基因全长的扩增 | 第59页 |
| ·中间表达载体构建 | 第59-60页 |
| ·表达载体构建 | 第60-61页 |
| ·农杆菌菌液PCR鉴定 | 第61-62页 |
| ·侵染条件筛选 | 第62-63页 |
| ·再生培养基筛选 | 第63-64页 |
| ·再生株系的获得 | 第64-65页 |
| ·生根选择压 | 第65页 |
| ·再生苗的鉴定 | 第65-67页 |
| ·小结与讨论 | 第67-69页 |
| ·菊花转基因效果的影响因素 | 第67-68页 |
| ·不同培养基配方影响转化效果 | 第67页 |
| ·预培养和延迟培养影响转化效果 | 第67-68页 |
| ·菊花转基因研究的难点 | 第68-69页 |
| 5 结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
| 附图 | 第80-84页 |
| 个人简介 | 第84-85页 |
| 导师简介 | 第85-86页 |
| 获得成果目录 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |