| 1 引言 | 第1-26页 |
| ·谷精草科及谷精草属简介 | 第11页 |
| ·谷精草科系统进化的研究现状 | 第11-22页 |
| ·谷精草科的系统演化地位 | 第11-13页 |
| ·谷精草科谷精草属植物的形态分类研究 | 第13-19页 |
| ·谷精草科的划分 | 第13-14页 |
| ·谷精草属的划分 | 第14-15页 |
| ·本试验研究种的形态学特征 | 第15-18页 |
| ·种皮结构在谷精草属植物分类研究中的应用 | 第18-19页 |
| ·谷精草科植物与分子系统学的研究进展 | 第19-22页 |
| ·植物分子系统学研究进展 | 第19-21页 |
| ·谷精草科及谷精草属植物分子系统学研究进展 | 第21-22页 |
| ·本论文研究目的、创新处及采用的研究技术 | 第22-26页 |
| ·研究目的 | 第22页 |
| ·创新之处 | 第22-23页 |
| ·研究技术 | 第23页 |
| ·RAPD技术原理简介 | 第23-24页 |
| ·ITS序列分析原理简介 | 第24-26页 |
| 2 材料和方法 | 第26-32页 |
| ·材料 | 第26页 |
| ·研究方法 | 第26-32页 |
| ·研究材料的准备 | 第27页 |
| ·总DNA的提取 | 第27-28页 |
| ·RAPD分子标记 | 第28-29页 |
| ·PCR扩增反应 | 第28-29页 |
| ·数据处理 | 第29页 |
| ·ITS序列分析 | 第29-32页 |
| ·PCR扩增 | 第30页 |
| ·内转录间隔区(ITS)序列测定 | 第30-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-43页 |
| ·总DNA提取 | 第32页 |
| ·RAPD扩增体系及反应条件的优化 | 第32-35页 |
| ·PCR反应条件的选择 | 第32-33页 |
| ·PCR扩增体系的优化 | 第33-35页 |
| ·DNA模板浓度 | 第33页 |
| ·引物浓度 | 第33-34页 |
| ·dNTP浓度 | 第34页 |
| ·Mg~(2+)浓度 | 第34-35页 |
| ·随机引物的筛选 | 第35-37页 |
| ·相似性系数分析与RAPD聚类图 | 第37-38页 |
| ·ITS序列分析及系统树的构建 | 第38-43页 |
| 4 结论和讨论 | 第43-52页 |
| ·结论 | 第43-44页 |
| ·总DNA的提取 | 第43页 |
| ·RAPD反应体系建立 | 第43页 |
| ·谷精草属六个组及种间关系 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-52页 |
| ·总DNA的提取 | 第44页 |
| ·RAPD反应体系建立 | 第44-45页 |
| ·谷精草属下六个组及种间关系 | 第45-50页 |
| ·Simplices组与Leucantherae组 | 第46-48页 |
| ·Simplices组与Apoda组 | 第48-49页 |
| ·Anisopetalae组、Disepala组和Heterochiton组 | 第49-50页 |
| ·目前研究中存在的问题及后续研究计划 | 第50-52页 |
| ·研究中存在的问题 | 第50页 |
| ·后续研究计划 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 图版Ⅰ 研究种的彩色照片 | 第58-59页 |
| 图版Ⅰ(续) | 第59-60页 |
| 图版Ⅱ 研究种的种皮扫描结构 | 第60-61页 |
| 图版Ⅱ(续) | 第61-62页 |
| 导师简介 | 第62-64页 |
| 个人简介 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |