| 中英文缩写字表 | 第1-8页 |
| 前言 | 第8-12页 |
| 一、 材料与方法 | 第12-27页 |
| (一) 实验设计 | 第12-13页 |
| (二) 在体实验 | 第13-20页 |
| 1 实验动物分组和喂养 | 第13页 |
| 2 心理应激模型的建立及动物旷场行为测定 | 第13-15页 |
| 3 海马谷氨酸含量及海马突触体谷氨酸摄取测定 | 第15页 |
| 4 海马NMDA受体变化 | 第15-16页 |
| 5 海马细胞[Ca~(2+)]_i及CaM水平测定 | 第16-17页 |
| 6 细胞凋亡的测定 | 第17-18页 |
| 7 原位杂交检测NR1、NR2A mRNA表达 | 第18-20页 |
| (三) 体外实验 | 第20-25页 |
| 1 大鼠海马神经元的原代培养 | 第20页 |
| 2 培养上清中LDH和NO水平测定 | 第20-21页 |
| 3 神经元存活率、凋亡和坏死的测定 | 第21-23页 |
| 4 RT-PCR检测NR1、NR2A、NR2BmRNA表达 | 第23-25页 |
| 5 海马神经元膜静息电位的测量 | 第25页 |
| (四) 数据处理 | 第25-27页 |
| 二、 结果与讨论 | 第27-59页 |
| (一) 应激动物模型及其行为变化 | 第27-35页 |
| 1 动物摄食量和体重变化 | 第27-28页 |
| 2 血清皮质醇水平变化 | 第28-29页 |
| 3 动物旷场行为变化 | 第29-31页 |
| 4 分析讨论 | 第31-35页 |
| (二) 海马神经元凋亡和／或坏死 | 第35-44页 |
| 1 海马组织DNA ladder测定结果 | 第35页 |
| 2 海马组织TUNEL测定结果 | 第35-36页 |
| 3 体外培养海马神经元存活率的变化 | 第36-37页 |
| 4 培养上清中LDH、NO水平测定 | 第37-38页 |
| 5 体外培养海马神经元的凋亡和坏死情况 | 第38-40页 |
| 6 分析讨论 | 第40-44页 |
| (三) 海马Ca~(2+)-CaM体系的变化 | 第44-47页 |
| 1 海马细胞[Ca~(2+)]_i水平测定结果 | 第44页 |
| 2 海马细胞活性CaM水平测定结果 | 第44-45页 |
| 3 分析讨论 | 第45-47页 |
| (四) 海马GIu-NMDA受体通路的变化 | 第47-59页 |
| 1 海马组织谷氨酸含量及海马突触体谷氨酸摄取变化 | 第47-48页 |
| 2 体外培养海马神经元膜静息电位的测量 | 第48页 |
| 3 海马NMDA受体结合实验结果 | 第48-50页 |
| 4 原位杂交检测海马NMDA受体亚基NR1、NR2A mRNA表达 | 第50-51页 |
| 5 RT-PCR检测体外培养海马神经元NR1、NR2A、NR2B mRNA表达 | 第51-53页 |
| 6 分析讨论 | 第53-59页 |
| 三、 结论 | 第59-62页 |
| 四、 参考文献 | 第62-73页 |
| 五、 文献综述 | 第73-90页 |
| 一、 锌营养与脑功能及行为的关系研究-历史和现状 | 第73-84页 |
| 二、 中枢神经系统中锌抑制NMDA受体反应的机制 | 第84-90页 |
| 附: 在学期间发表的论文(全文) | 第90-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
