中文摘要 | 第1-12页 |
英文摘要 | 第12-14页 |
1.绪论 | 第14-28页 |
·酶的催化作用特性 | 第14-15页 |
·酶在有机合成中的应用 | 第15页 |
·酶在手性合成中的应用 | 第15-17页 |
·酶法确定光活性化合物的构型 | 第16页 |
·酶法制备同位素标记的手性化合物 | 第16页 |
·酶法拆分光活性外消旋化合物 | 第16-17页 |
·水解酶类 | 第17-21页 |
·脂肪酶的来源 | 第18页 |
·脂肪酶的结构 | 第18-19页 |
·脂肪酶底物特异性 | 第19-21页 |
·酶在有机合成中存在的问题 | 第21-22页 |
·酶的稳定化 | 第22-24页 |
·酶稳定化的方法 | 第22-24页 |
·酶稳定化方法的比较 | 第24页 |
·提高酶选择性的方法 | 第24-25页 |
·本课题的研究背景及思路 | 第25-27页 |
·课题资助 | 第27-28页 |
2.Candida rugosa脂肪酶活化 | 第28-41页 |
·引言 | 第28页 |
·实验材料与方法 | 第28-31页 |
·结果与讨论 | 第31-39页 |
·有机溶剂处理Candida rugosa脂肪酶 | 第31-34页 |
·2—丙醇处理后脂肪酶的立体异构选择性 | 第34-35页 |
·2—丙醇处理Candida rugosa脂肪酶与粗酶的成份比较 | 第35-36页 |
·Candida rugosa脂肪酶的立体异构选择性改变的分子基础 | 第36-38页 |
·Candida rugosa脂肪酶的离子交换层析 | 第38-39页 |
·本章小节 | 第39-41页 |
3.交联酶晶体的制备及其稳定性的研究 | 第41-57页 |
·引言 | 第41页 |
·实验材料与方法 | 第41-43页 |
·结果与讨论 | 第43-56页 |
·Candida rugosa脂肪酶晶体的制备 | 第43-50页 |
·结晶方法的选择 | 第44-45页 |
·沉淀剂的选择 | 第45-47页 |
·酶结晶pH值 | 第47-48页 |
·结晶时间和温度 | 第48页 |
·结晶条件的正交优化 | 第48-50页 |
·Candida rugosa脂肪酶晶体的交联 | 第50-53页 |
·交联反应的戊二醛浓度 | 第50-51页 |
·交联时间 | 第51-52页 |
·交联反应的pH值对酶晶体活力的影响 | 第52页 |
·交联温度对交联酶晶体的影响 | 第52-53页 |
·交联酶晶体的干燥 | 第53页 |
·交联酶晶体的性质 | 第53-56页 |
·pH稳定性 | 第53-54页 |
·温度稳定性 | 第54页 |
·交联酶晶体在水溶性有机溶剂中的活性 | 第54-56页 |
·本章小结 | 第56-57页 |
4.酶在晶体状态下的催化特性 | 第57-64页 |
·引言 | 第57页 |
·实验材料与方法 | 第57-59页 |
·酶在晶体状态的催化特性 | 第59-64页 |
·酶在晶体状态的催化动力学模型的提出 | 第59-60页 |
·酶在晶体状态的催化动力学 | 第60-62页 |
·交联Candida rugosa脂肪酶晶体的界面活性 | 第62-64页 |
5.交联酶晶体催化手性酯的水解拆分 | 第64-75页 |
·引言 | 第64页 |
·材料与方法 | 第64-68页 |
·结果与讨论 | 第68-73页 |
·Candida rugosa脂肪酶交联酶晶体催化酯水解拆分过程 | 第68-69页 |
·交联酶晶体量的确定 | 第69-70页 |
·反应温度对酮基布洛芬酯拆分的影响 | 第70页 |
·羧酸酯中醇部分对拆分反应的影响 | 第70-71页 |
·反应体系pH值对拆分反应的影响 | 第71-72页 |
·添加聚乙二醇对酶催化拆分过程的影响 | 第72-73页 |
·本章小结 | 第73-75页 |
6.非水相中交联酶晶体的催化 | 第75-88页 |
·引言 | 第75页 |
·材料与方法 | 第75-78页 |
·结果与讨论 | 第78-86页 |
·交联酶晶体催化反应过程 | 第78-79页 |
·交联酶晶体量的确定 | 第79-80页 |
·酸醇比对酯化反应的影响 | 第80-81页 |
·反应温度对酯化反应影响 | 第81页 |
·有机醇的结构对酯化反应的影响 | 第81-82页 |
·反应介质体系的选择 | 第82-83页 |
·低水有机溶剂介质体系中疏水有机溶剂的选择 | 第83-85页 |
·水含量对酶催化酯化反应的影响 | 第85-86页 |
·本章小结 | 第86-88页 |
结论 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-101页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第101页 |
致谢 | 第101页 |