| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一部分 载香豆素-6及量子点的麦胚凝集素修饰纳米粒的构建与质量评价 | 第15-40页 |
| 1 仪器和材料 | 第16-18页 |
| ·仪器 | 第16页 |
| ·材料和试剂 | 第16-17页 |
| ·溶液的配制 | 第17-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-27页 |
| ·共聚物的制备 | 第18-19页 |
| ·PEG-PLA纳米粒(NP)的制备 | 第19-20页 |
| ·麦胚凝集素修饰PEG-PLA纳米粒(WGA-NP)的制备 | 第20-22页 |
| ·Cou-6体外HPLC分析方法建立 | 第22-23页 |
| ·QDs的体外分析方法 | 第23页 |
| ·载Cou-6及QDs的NP和WGA-NP的表征 | 第23-25页 |
| ·Cou-6作为荧光探针的可行性分析 | 第25-26页 |
| ·QDs作为荧光探针的可行性分析 | 第26-27页 |
| 3 实验结果 | 第27-37页 |
| ·WGA浓度及巯基化程度的测定与计算 | 第27页 |
| ·Cou-6体外HPLC分析方法建立 | 第27-29页 |
| ·QDs的体外分析方法 | 第29页 |
| ·NP和WGA-NP的表征 | 第29-33页 |
| ·Cou-6作为荧光探针的可行性分析 | 第33-35页 |
| ·QDs作为荧光探针的可行性分析 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-38页 |
| ·NP制备方法的选择 | 第37页 |
| ·WGA-NP制备工艺的优化 | 第37页 |
| ·NP制备过程中超声时间、功率及超声探头位置的选择 | 第37-38页 |
| ·NP-Cou-6和WGA-NP-Cou-6体外泄漏试验漏槽条件及泄漏液的选择 | 第38页 |
| ·采用红细胞凝集试验考察Cou-6及QDs作为荧光探针的可行性 | 第38页 |
| 5.小结 | 第38-40页 |
| 第二部分 WGA-NP经鼻入脑的药效学评价 | 第40-55页 |
| 第一节 盐酸美沙酮不同途径大鼠给药后的生物利用度研究 | 第41-45页 |
| 1 仪器和材料 | 第41页 |
| ·仪器 | 第41页 |
| ·材料和试剂 | 第41页 |
| ·实验动物 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-43页 |
| ·动物给药及取样 | 第41-42页 |
| ·血浆样品预处理方法 | 第42页 |
| ·美沙酮HPLC分析方法建立 | 第42-43页 |
| 3 实验结果 | 第43-45页 |
| ·HPLC分析方法 | 第43-44页 |
| ·生物利用度试验结果 | 第44-45页 |
| 第二节 WGA-NP-VIP大鼠经鼻给药后药效学评价 | 第45-55页 |
| 1 仪器和材料 | 第45-47页 |
| ·仪器 | 第45-46页 |
| ·材料和试剂 | 第46页 |
| ·实验动物 | 第46页 |
| ·溶液的配制 | 第46-47页 |
| 2 实验方法 | 第47-50页 |
| ·WGA-NP-VIP的制备及表征 | 第47-48页 |
| ·WGA-NP-VIP大鼠鼻腔给药的药效学研究 | 第48-50页 |
| 3 实验结果 | 第50-53页 |
| ·NP-VIP及WGA-NP-VIP的表征 | 第50页 |
| ·Morris水迷宫实验结果 | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53页 |
| ·为何选择WGA-NP作为蛋白多肽的载体并采用鼻腔给药? | 第53页 |
| 5 小结 | 第53-55页 |
| 第三部分 WGA-NP体外跨细胞转运机理的初步探讨 | 第55-75页 |
| 1 仪器和材料 | 第56-58页 |
| ·仪器 | 第56页 |
| ·材料和试剂 | 第56-57页 |
| ·溶液的配制 | 第57页 |
| ·细胞 | 第57-58页 |
| 2 实验方法 | 第58-63页 |
| ·NP-Cou-6及WGA-NP-Cou-6的制备 | 第58页 |
| ·Caco-2细胞模型的建立 | 第58-59页 |
| ·Caco-2细胞模型的验证 | 第59-60页 |
| ·WGA-NP的胞内定位及其摄取机理的初步探讨 | 第60-61页 |
| ·WGA-NP跨细胞转运途径的初步阐明 | 第61-63页 |
| 3 实验结果 | 第63-71页 |
| ·细胞模型验证 | 第63-65页 |
| ·摄取实验结果 | 第65-67页 |
| ·转运实验结果 | 第67-71页 |
| 4 讨论 | 第71-73页 |
| ·Caco-2单层细胞模型的验证 | 第71页 |
| ·Caco-2细胞单分子层跨膜电阻(TEER)随培养时间的变化情况 | 第71-72页 |
| ·体内外机理的相关性 | 第72-73页 |
| 5 小结 | 第73-75页 |
| 第四部分 WGA-NP经鼻入脑体内转运通路的初步探讨 | 第75-89页 |
| 1 仪器和材料 | 第75-76页 |
| ·仪器 | 第75页 |
| ·材料和试剂 | 第75-76页 |
| ·实验动物 | 第76页 |
| ·溶液的配制 | 第76页 |
| 2 实验方法 | 第76-79页 |
| ·NP-Cou-6及WGA-NP-Cou-6的制备 | 第76页 |
| ·动物实验 | 第76-77页 |
| ·组织切片的制备 | 第77-78页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第78-79页 |
| 3 实验结果 | 第79-87页 |
| ·泄漏量Cou-6对照溶液在鼻腔粘膜上的分布情况 | 第79页 |
| ·NP-Cou-6和WGA-NP-Cou-6不同时间在鼻粘膜上不同部位分布情况比较 | 第79-84页 |
| ·NP和WGA-NP在鼻粘膜上的选择性分布 | 第84-85页 |
| ·NP和WGA-NP透鼻粘膜吸收途径 | 第85-87页 |
| ·NP、WGA-NP入脑转运通路探讨 | 第87页 |
| 4 讨论 | 第87-88页 |
| ·免疫荧光染色时滴加正常山羊血清封闭 | 第87页 |
| ·NP和WGA-NP在鼻粘膜表面荧光强度的区别 | 第87-88页 |
| ·NP和WGA-NP对鼻腔粘膜的选择性 | 第88页 |
| 5 小结 | 第88-89页 |
| 全文总结 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-95页 |
| 综述 | 第95-104页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
