| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第1章 选题依据 | 第14-42页 |
| 1.1 研究意义 | 第14-15页 |
| 1.2 国内外研究现状及存在问题分析 | 第15-38页 |
| 1.2.1 静电纺丝技术 | 第15-18页 |
| 1.2.2 纳米晶材料 | 第18-25页 |
| 1.2.3 纳米晶功能化电纺复合纤维的制备 | 第25-31页 |
| 1.2.4 纳米晶功能化电纺复合纤维的应用 | 第31-37页 |
| 1.2.5 存在的主要问题 | 第37-38页 |
| 1.3 研究目标、研究内容及拟解决的关键科学问题 | 第38-40页 |
| 1.3.1 研究目标 | 第38页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第38-40页 |
| 1.3.3 拟解决的关键科学问题 | 第40页 |
| 1.4 拟采取的研究方案及技术路线 | 第40-42页 |
| 1.4.1 研究方案 | 第40-41页 |
| 1.4.2 技术路线 | 第41-42页 |
| 第2章 Cu_2?~xSeNPs/rGO电纺纤维的制备及其协同催化还原对硝基苯酚 | 第42-60页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第43-44页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第44页 |
| 2.2.3 Cu_2?~xSe纳米颗粒的合成 | 第44页 |
| 2.2.4 各电纺前驱液及其电纺纤维的制备 | 第44-45页 |
| 2.2.5 4-NP的催化还原 | 第45页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第45-58页 |
| 2.3.1 单分散的Cu_2?~xSe@PVP纳米颗粒 | 第45-46页 |
| 2.3.2 各电纺纳米纤维膜的制备 | 第46-47页 |
| 2.3.3 Cu_2?~xSe/rGO/PVP电纺纤维膜的结构和组成表征 | 第47-50页 |
| 2.3.4 Cu_2?~xSe/rGO/PVP电纺纤维膜的催化活性 | 第50-55页 |
| 2.3.5 Cu_2?~xSe/rGO/PVP电纺纤维对4-NP催化还原机理的探究 | 第55-57页 |
| 2.3.6 Cu_2?~xSe/rGO/PVP电纺纤维的循环利用性和稳定性 | 第57-58页 |
| 2.4 结论 | 第58-60页 |
| 第3章 基于静电组装法制备AgNPs/电纺纤维及其SERS基pH传感的构建 | 第60-80页 |
| 3.1 引言 | 第60-62页 |
| 3.2 实验部分 | 第62-64页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第62页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第62页 |
| 3.2.3 负电性AgNPs的制备 | 第62-63页 |
| 3.2.4 电纺纳米纤维的制备 | 第63页 |
| 3.2.5 将AgNPs静电组装于PEI/PVA电纺纤维表面 | 第63页 |
| 3.2.6 旋涂法制备PEI/PVA和AgNPs/PEI/PVA薄膜 | 第63页 |
| 3.2.7 SERS性能的考察 | 第63-64页 |
| 3.2.8 SERS基的pH传感 | 第64页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第64-78页 |
| 3.3.1 AgNPs的制备 | 第64页 |
| 3.3.2 静电组装法制备AgNPs/PEI/PVANFs | 第64-67页 |
| 3.3.3 AgNPs/PEI/PVA电纺纤维膜作为高活性的SERS基底 | 第67-73页 |
| 3.3.4 基于p-ATP灵敏SERS信号的pH传感 | 第73-78页 |
| 3.3.5 检测人体尿液的pH值 | 第78页 |
| 3.4 结论 | 第78-80页 |
| 第4章 基于表面功能化量子点复合电纺纤维构建网状荧光适体传感平台用于检测生物标志物 | 第80-98页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-85页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第81-82页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第82-83页 |
| 4.2.3 生物素功能化的PEI/PVA电纺纤维的制备 | 第83页 |
| 4.2.4 QDs点亮的电纺纳米纤维 | 第83页 |
| 4.2.5 荧光适配体传感电纺纤维膜的制备 | 第83页 |
| 4.2.6 平面结构的荧光适配体传感膜的制备 | 第83-84页 |
| 4.2.7 13nmAuNPs及DNA功能化的AuNPs的制备 | 第84页 |
| 4.2.8 基于NSET的荧光分析技术检测PSA | 第84页 |
| 4.2.9 荧光适配体电纺传感膜的共聚焦荧光显微成像 | 第84-85页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第85-96页 |
| 4.3.1 AuNPs及DNA-AuNPs复合物的制备 | 第85-86页 |
| 4.3.2 生物素功能化电纺纳米纤维的制备 | 第86页 |
| 4.3.3 量子点点亮的PEI/PVA电纺纳米纤维 | 第86-88页 |
| 4.3.4 荧光适配体传感膜的制备及其传感性能分析 | 第88-90页 |
| 4.3.5 QDs/PEI/PVAASF用于检测PSA | 第90-94页 |
| 4.3.6 网状结构的电纺纤维传感膜的优势 | 第94-96页 |
| 4.3.7 实际血清样品中PSA的分析 | 第96页 |
| 4.4 结论 | 第96-98页 |
| 第5章 基于固相比率荧光电纺纤维膜构建一种铜离子介导的色度免疫分析方法 | 第98-120页 |
| 5.1 引言 | 第98-100页 |
| 5.2 实验部分 | 第100-103页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第100页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第100-101页 |
| 5.2.3 荧光CDs和CdTeQDs的制备 | 第101页 |
| 5.2.4 各电纺纤维膜的制备 | 第101-102页 |
| 5.2.5 r-CdTe/CDs/CA电纺纤维膜可视化检测Cu~(2+) | 第102页 |
| 5.2.6 AFP抗体标记CuONPs的制备 | 第102页 |
| 5.2.7 r-CdTe/CDs/CA纤维传感膜用于Cu~(2+)介导的生物传感 | 第102-103页 |
| 5.2.8 荧光适配体电纺传感膜的共聚焦荧光显微成像 | 第103页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第103-118页 |
| 5.3.1 CDs、CdTeQDs@MPA和CDs/CA、CdTeQDsENFs的制备 | 第103-104页 |
| 5.3.2 r-CdTeQDs/g-CDs/CAENFs的制备 | 第104-108页 |
| 5.3.3 比率荧光型的电纺传感膜用于检测Cu~(2+)的可行性分析 | 第108-111页 |
| 5.3.4 r-CdTeQDs/g-CDs/CAENFs可视化的检测Cu~(2+) | 第111-115页 |
| 5.3.5 r-CdTeQDs/g-CDs/CANFs用于Cu~(2+)介导的生物传感 | 第115-117页 |
| 5.3.6 实际血清样品中AFP的分析检测 | 第117-118页 |
| 5.4 结论 | 第118-120页 |
| 第6章 总结与展望 | 第120-124页 |
| 6.1 总结 | 第120-121页 |
| 6.2 论文创新点 | 第121页 |
| 6.3 展望 | 第121-124页 |
| 6.3.1 功能性纳米晶/电纺纤维膜的表界面调控 | 第122页 |
| 6.3.2 多级结构的电纺纤维膜的表面功能化 | 第122页 |
| 6.3.3 柔性可穿戴传感器件 | 第122-123页 |
| 6.3.4 高通量的传感膜材料用于多靶物的分析检测 | 第123-124页 |
| 参考文献 | 第124-140页 |
| 附录 | 第140-142页 |
| 科研成果 | 第142-146页 |
| 致谢 | 第146-147页 |
