摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩略表 | 第7-15页 |
第一章 绪论 | 第15-26页 |
1 原发性肝癌 | 第15-22页 |
1.1 概述 | 第15页 |
1.2 肝癌的病因流行病学 | 第15-18页 |
1.2.1 病毒性肝炎 | 第15-16页 |
1.2.2 肝硬化 | 第16页 |
1.2.3 黄曲霉毒素 | 第16-17页 |
1.2.4 酒精性肝病 | 第17页 |
1.2.5 非酒精性肝脏疾病 | 第17页 |
1.2.6 其他因素 | 第17-18页 |
1.3 肝脏的诊断和治疗 | 第18-19页 |
1.4 原发肝癌发病分子机制和研究进展 | 第19-20页 |
1.4.1 原癌基因的激活和抑癌基因的失活 | 第19页 |
1.4.2 细胞周期与原发性肝癌 | 第19-20页 |
1.4.3 表观遗传学与原发性肝癌 | 第20页 |
1.5 原发性肝癌的研究进展 | 第20-22页 |
2 乙肝病毒X蛋白结合蛋白 | 第22-25页 |
2.1 概述 | 第22-23页 |
2.2 HBXIP与细胞凋亡 | 第23页 |
2.3 HBXIP与细胞增殖 | 第23-24页 |
2.4 HBXIP与中心体的复制 | 第24页 |
2.5 HBXIP与细胞转移 | 第24-25页 |
3 本论文的研究内容与研究意义 | 第25-26页 |
第二章 材料与方法 | 第26-47页 |
1 材料 | 第26-29页 |
1.1 菌种与细胞株 | 第26页 |
1.2 质粒 | 第26页 |
1.3 培养基和缓冲液 | 第26-27页 |
1.4 琼脂糖凝胶 | 第27页 |
1.5 主要试剂 | 第27-29页 |
2 实验设备 | 第29页 |
3 临床标本 | 第29-30页 |
4 实验方法 | 第30-42页 |
4.1 细胞培养 | 第30-31页 |
4.1.1 细胞复苏 | 第30页 |
4.1.2 细胞传代 | 第30-31页 |
4.1.3 细胞冻存 | 第31页 |
4.2 质粒提取 | 第31-33页 |
4.3 实时定量聚合酶链反应(Real-time PCR) | 第33-35页 |
4.4 免疫印迹 | 第35-36页 |
4.4.1 细胞蛋白样品的制备 | 第35页 |
4.4.2 组织蛋白样品的制备 | 第35-36页 |
4.5 SDS-PAGE电泳 | 第36-38页 |
4.6 DNA胶回收(Sangon Biotech)胶回收试剂盒 | 第38页 |
4.7 Real-time PCR引物和qPCR引物计 | 第38-40页 |
4.8 荧光素报告基因实验 | 第40-41页 |
4.9 HE染色,苏木素—伊红染色法 | 第41-42页 |
5 | 第42-47页 |
5.1 细胞计数实验 | 第42页 |
5.2 Transwell实验 | 第42-43页 |
5.2.1 肿瘤细胞迁移实验 | 第42-43页 |
5.2.2 肿瘤细胞侵袭实验 | 第43页 |
5.3 细胞系构建 | 第43-46页 |
5.4 数据的统计和分析 | 第46-47页 |
第三章 实验结果与分析 | 第47-59页 |
3.1 肝细胞癌中HBXIP表达量的检测 | 第47-48页 |
3.2 肿瘤组织中HBXIP的差异表达与肝癌患者预后的关系 | 第48-50页 |
3.3 过表达HBXIP能促进肝癌细胞的迁移和侵袭 | 第50-52页 |
3.4 下调HBXIP能抑制肝癌细胞的迁移和侵袭 | 第52-53页 |
3.5 HBXIP调节肝癌细胞中MMP15的mRNA与蛋白水平 | 第53-55页 |
3.6 HBXIP和MMP15在肝癌组织中正相关 | 第55页 |
3.7 HBXIP通过调节MMP15促进肝癌转移 | 第55-56页 |
3.8 HBXIP可以结合MMP15启动子区域 | 第56-57页 |
3.9 荷瘤小鼠中,沉默HBXIP抑制SMMC-7721细胞的转移能力 | 第57-59页 |
第四章 讨论与展望 | 第59-62页 |
参考文献 | 第62-66页 |
致谢 | 第66页 |