| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-31页 |
| 1.1 磷营养元素概述 | 第18-19页 |
| 1.1.1 磷的重要性 | 第18页 |
| 1.1.2 植物缺磷现状 | 第18-19页 |
| 1.2 植物对缺磷应对策略 | 第19-20页 |
| 1.2.1 磷转运蛋白参与磷的吸收和转运 | 第19-20页 |
| 1.2.2 丛枝菌根真菌促进植物对磷的吸收 | 第20页 |
| 1.3 PHT1磷转运蛋白研究进展 | 第20-25页 |
| 1.3.1 植物及微生物中鉴定的PHT1基因 | 第20-21页 |
| 1.3.2 磷转运蛋白的结构及转运机制 | 第21-23页 |
| 1.3.3 与菌根共生相关的磷转运蛋白研究进展 | 第23-25页 |
| 1.4 低磷信号转导路径相关转录因子 | 第25-28页 |
| 1.5 菌根信号转导途径相关转录因子 | 第28-30页 |
| 引言 | 第30-31页 |
| 第二章 ZmPHT1家族的鉴定、进化分析及AM真菌诱导分析 | 第31-67页 |
| 引言 | 第31页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第31-44页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.1.2 玉米培养与处理 | 第31-32页 |
| 2.1.3 菌根侵染的检测 | 第32页 |
| 2.1.4 叶绿素含量的测定 | 第32页 |
| 2.1.5 植物磷元素含量的测定 | 第32页 |
| 2.1.6 生物信息学分析 | 第32-33页 |
| 2.1.7 玉米根总RNA的提取 | 第33-37页 |
| 2.1.8 酵母突变体回补实验 | 第37-44页 |
| 2.2 结果与分析 | 第44-62页 |
| 2.2.1 低磷胁迫下AM真菌促进玉米的生长 | 第44-45页 |
| 2.2.2 低磷胁迫下AM真菌提高玉米叶绿素的含量 | 第45页 |
| 2.2.3 低磷胁迫下AM真菌促进玉米对磷的吸收 | 第45-46页 |
| 2.2.4 玉米PHT1基因家族的鉴定及属性 | 第46-48页 |
| 2.2.5 玉米PHT1家族基因的结构及进化 | 第48-50页 |
| 2.2.6 玉米PHT1基因与已报道的PHT1基因的进化关系 | 第50-52页 |
| 2.2.7 玉米PHT1家族基因的定位及复制 | 第52-55页 |
| 2.2.8 玉米PHT1家族基因的组织模式 | 第55页 |
| 2.2.9 低磷条件下玉米PHT1基因的表达分析 | 第55-57页 |
| 2.2.10 玉米PHT1基因回补酵母突变体 | 第57-59页 |
| 2.2.11 AM真菌共生条件下玉米PHT1基因表达模式分析 | 第59-61页 |
| 2.2.12 玉米PHT1的启动子元件分析 | 第61-62页 |
| 2.3 讨论 | 第62-67页 |
| 第三章 ZmPHT1;9基因磷吸收及转运功能分析 | 第67-90页 |
| 引言 | 第67页 |
| 3.1 实验材料及方法 | 第67-76页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第67页 |
| 3.1.2 菌株及载体材料 | 第67页 |
| 3.1.3 酶及试剂 | 第67-68页 |
| 3.1.4 仪器设备 | 第68页 |
| 3.1.5 实验方法 | 第68-76页 |
| 3.2 实验结果与分析 | 第76-87页 |
| 3.2.1 ZmPHT1;9的分子特征及克隆 | 第76-78页 |
| 3.2.2 ZmPHT1;9的启动子活性分析 | 第78-79页 |
| 3.2.3 ZmPHT1;9的亚细胞定位 | 第79-80页 |
| 3.2.4 ZmPHT1;9回补酵母突变体 | 第80-81页 |
| 3.2.5 ZmPHT1;9过表达水稻的获得与鉴定 | 第81-84页 |
| 3.2.6 ZmPHT1;9过表达水稻不同磷处理下的表型分析 | 第84-86页 |
| 3.2.7 ZmPHT1;9过表达对水稻其它低磷响应基因表达的影响 | 第86-87页 |
| 3.3 讨论 | 第87-90页 |
| 第四章 AM真菌对ZmPHT1;9的调控分析 | 第90-102页 |
| 引言 | 第90页 |
| 4.1 实验材料和方法 | 第90-93页 |
| 4.1.1 植物、菌株及载体材料 | 第90页 |
| 4.1.2 酶及试剂 | 第90页 |
| 4.1.3 ZmPHT1;9启动子的克隆及载体构建 | 第90-91页 |
| 4.1.4 百脉根毛状根与AM真菌共生体系的建立 | 第91-92页 |
| 4.1.5 百脉根毛状根与AM真菌共生的检测及观察 | 第92页 |
| 4.1.6 RNA的提取、质量检测及qRT-PCR | 第92-93页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第93-99页 |
| 4.2.1 转基因百脉根毛状根的获得及鉴定 | 第93页 |
| 4.2.2 转基因百脉根毛状根与AM真菌共生体系的建立及鉴定 | 第93-94页 |
| 4.2.3 AM真菌对ZmPHT1;9的调控分析 | 第94-97页 |
| 4.2.4 RNA的提取及质量检测 | 第97-98页 |
| 4.2.5 磷转运及共生相关基因的qRT-PCR分析 | 第98-99页 |
| 4.3 讨论 | 第99-102页 |
| 第五章 AM真菌诱导ZmPHT1;9的分子机制研究 | 第102-126页 |
| 引言 | 第102页 |
| 5.1 实验材料和方法 | 第102-109页 |
| 5.1.1 植物、菌株及载体材料 | 第102页 |
| 5.1.2 酶及试剂 | 第102页 |
| 5.1.3 cDNA全长扩增 | 第102-106页 |
| 5.1.4 酵母双杂交实验 | 第106-107页 |
| 5.1.5 酵母单杂交实验 | 第107-108页 |
| 5.1.6 双分子荧光互补实验 | 第108-109页 |
| 5.2 实验结果与分析 | 第109-124页 |
| 5.2.1 玉米ZmPHR-like基因的克隆及分析 | 第109-112页 |
| 5.2.2 玉米ZmPHR-like基因的功能分析 | 第112-115页 |
| 5.2.3 玉米ZmPHR-like对PHT1基因的调控分析 | 第115-116页 |
| 5.2.4 玉米ZmD9、ZmHAM1、ZmSHR1和ZmHAM2基因的克隆及分析 | 第116-118页 |
| 5.2.5 ZmPHR-like与ZmD9、ZmHAM1、ZmSHR1、ZmHAM2的互作分析 | 第118-120页 |
| 5.2.6 ZmD9、ZmHAM1、ZmSHR1和ZmHAM2的互作分析 | 第120-124页 |
| 5.3 讨论 | 第124-126页 |
| 结论 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-143页 |
| 附录 | 第143-150页 |
| 作者简介 | 第150-151页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第151页 |
