| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-19页 |
| 1.1 乳酸菌概述 | 第13页 |
| 1.2 多糖概述 | 第13页 |
| 1.3 乳酸菌胞外多糖 | 第13-18页 |
| 1.3.1 乳酸菌胞外多糖简介 | 第13-14页 |
| 1.3.2 乳酸菌胞外多糖的一般结构特征 | 第14页 |
| 1.3.3 影响乳酸菌胞外多糖的产糖因素 | 第14-15页 |
| 1.3.4 乳酸菌胞外多糖的提取分离与纯化 | 第15-16页 |
| 1.3.5 乳酸菌胞外多糖的纯度、单糖组成和成键方式检测 | 第16-17页 |
| 1.3.6 乳酸菌胞外多糖的应用 | 第17-18页 |
| 1.4 本课题的研究内容和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 Lactobacillus pantheris TCP102产糖条件优化 | 第19-32页 |
| 2.1 材料与设备 | 第19页 |
| 2.1.1 菌株 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-23页 |
| 2.2.1 Lactobacillus pantheris TCP102菌种特性 | 第20页 |
| 2.2.2 Lactobacillus pantheris TCP102菌株生长曲线和生长过程中发酵液pH变化的测定 | 第20页 |
| 2.2.3 Lactobacillus pantheris TCP102发酵培养基的选择 | 第20-21页 |
| 2.2.4 发酵时间优化 | 第21页 |
| 2.2.5 发酵温度优化 | 第21-22页 |
| 2.2.6 发酵初始pH优化 | 第22页 |
| 2.2.7 发酵接种量优化 | 第22-23页 |
| 2.3 实验结果 | 第23-31页 |
| 2.3.1 Lactobacillus pantheris TCP102菌种特性 | 第23-24页 |
| 2.3.2 Lactobacillus pantheris TCP102的生长曲线 | 第24页 |
| 2.3.3 Lactobacillus pantheris TCP102发酵过程中发酵液的pH变化 | 第24-25页 |
| 2.3.4 培养基选择结果 | 第25-26页 |
| 2.3.5 培养时间优化结果 | 第26-27页 |
| 2.3.6 培养温度优化结果 | 第27-28页 |
| 2.3.7 初始pH优化结果 | 第28-29页 |
| 2.3.8 接种量优化结果 | 第29-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 Lactobacillus pantheris TCP102胞外多糖的提取与分离纯化及纯度鉴定 | 第32-47页 |
| 3.1 材料与设备 | 第32-33页 |
| 3.1.1 菌株和发酵条件 | 第32页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 Lactobacillus pantheris TCP102胞外多糖的提取 | 第33页 |
| 3.2.2 胞外多糖的DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换纯化 | 第33页 |
| 3.2.3 胞外多糖的Sepharose CL-6B分子筛纯化 | 第33-34页 |
| 3.2.4 紫外光谱扫描 | 第34页 |
| 3.2.5 胞外多糖分子量测定 | 第34页 |
| 3.2.6 单糖成分分析 | 第34-35页 |
| 3.2.7 红外光谱分析 | 第35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-46页 |
| 3.3.1 Lactobacillus pantheris TCP102 EPS的DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换纯化结果 | 第35页 |
| 3.3.2 Lactobacillus pantheris TCP102 EPS的Sepharose CL-6B分子筛纯化结果 | 第35-37页 |
| 3.3.3 Lactobacillus pantheris TCP102 EPS的紫外光谱扫描结果 | 第37-38页 |
| 3.3.4 Lactobacillus pantheris TCP102 EPS的分子量测定结果 | 第38-40页 |
| 3.3.5 Lactobacillus pantheris TCP102 EPS的单糖组成测定结果 | 第40-44页 |
| 3.3.6 红外扫描结果 | 第44-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-47页 |
| 第四章 Lactobacillus pantheris TCP102胞外多糖体外免疫活性研究 | 第47-59页 |
| 4.1 材料与设备 | 第47-48页 |
| 4.1.1 细胞 | 第47页 |
| 4.1.2 主要试剂及耗材 | 第47-48页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第48页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 4.2.1 胞外多糖对巨噬细胞Ana-1增殖的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 EPS对巨噬细胞Ana-1释放NO的影响(Griess法) | 第49页 |
| 4.2.3 Elisa检测EPS对巨噬细胞Ana-1分泌TNF-α的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.4 Elisa检测EPS对巨噬细胞Ana-1分泌IL-6的影响 | 第50页 |
| 4.2.5 EPS对腹腔巨噬细胞NO释放的影响(Griess法) | 第50-51页 |
| 4.2.6 Elisa检测EPS对腹腔巨噬细胞分泌TNF-α的影响 | 第51页 |
| 4.2.7 Elisa检测EPS对腹腔巨噬细胞分泌IL-6的影响 | 第51页 |
| 4.3 实验结果 | 第51-57页 |
| 4.3.1 胞外多糖刺激巨噬细胞Ana-124h的增殖结果 | 第51-52页 |
| 4.3.2 胞外多糖刺激巨噬细胞Ana-112h后NO的释放量(Griess法) | 第52-53页 |
| 4.3.3 Elisa检测胞外多糖刺激巨噬细胞Ana-124h后TNF-α的释放量 | 第53-54页 |
| 4.3.4 Elisa检测胞外多糖刺激巨噬细胞Ana-124h后IL-6的释放量 | 第54-55页 |
| 4.3.5 胞外多糖刺激小鼠腹腔巨噬细胞12h后NO的释放量(Griess法) | 第55-56页 |
| 4.3.6 Elisa检测胞外多糖刺激腹腔巨噬细胞24h后TNF-α的释放量 | 第56-57页 |
| 4.3.7 Elisa检测胞外多糖刺激腹腔巨噬细胞24h后IL-6的释放量 | 第57页 |
| 4.4 讨论 | 第57-59页 |
| 第五章 Lactobacillus pantheris TCP102胞外多糖体外抑制癌细胞增殖作用研究 | 第59-77页 |
| 5.1 材料与设备 | 第59-60页 |
| 5.1.1 细胞 | 第59页 |
| 5.1.2 主要试剂及耗材 | 第59-60页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第60页 |
| 5.1.4 主要试剂配制 | 第60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-61页 |
| 5.2.1 MTS法检测胞外多糖对结肠癌细胞HCT-116增殖的影响 | 第60-61页 |
| 5.2.2 MTS法检测胞外多糖对结肠癌细胞Caco-2增殖的影响 | 第61页 |
| 5.2.3 MTS法检测胞外多糖对卵巢癌细胞A-2780增殖的影响 | 第61页 |
| 5.2.4 MTS法检测胞外多糖对胃癌细胞BCG-803增殖的影响 | 第61页 |
| 5.3 实验结果 | 第61-76页 |
| 5.3.1 胞外多糖抑制结肠癌细胞HCT-116增殖的结果 | 第61-64页 |
| 5.3.2 胞外多糖抑制结肠癌细胞Caco-2增殖的结果 | 第64-68页 |
| 5.3.3 胞外多糖抑制卵巢癌细胞A-2780增殖的结果 | 第68-72页 |
| 5.3.4 胞外多糖抑制胃癌细胞BCG-803增殖的结果 | 第72-76页 |
| 5.4 讨论 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 硕士期间发表论文 | 第85页 |
