| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 前言 | 第12页 |
| 1.2 微藻及其应用 | 第12-14页 |
| 1.2.1 微藻概述 | 第12页 |
| 1.2.2 微藻应用 | 第12-14页 |
| 1.3 微藻中的活性物质及其生物学功能 | 第14-16页 |
| 1.3.1 微藻多糖 | 第14页 |
| 1.3.2 藻胆蛋白 | 第14-15页 |
| 1.3.3 不饱和脂肪酸 | 第15-16页 |
| 1.3.4 其他活性物质 | 第16页 |
| 1.4 螺旋藻的研究现状 | 第16-23页 |
| 1.4.1 螺旋藻简介 | 第16-18页 |
| 1.4.2 螺旋藻多糖研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4.3 藻蓝蛋白研究进展 | 第20-23页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第23页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第23-25页 |
| 2 螺旋藻多糖的分级制备及体外活性研究 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验试剂及药品 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.3 实验仪器与设备 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 螺旋藻多糖的分级制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 多糖理化性质的测定 | 第27页 |
| 2.2.3 多糖的红外光谱分析 | 第27页 |
| 2.2.4 体外抗氧化活性研究 | 第27-28页 |
| 2.2.5 体外抑制α-葡萄糖苷酶活性研究 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-33页 |
| 2.3.1 总糖含量的测定 | 第29页 |
| 2.3.2 三氯乙酸沉淀次数对螺旋藻多糖提取效果的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.3 氧化降解联合超滤纯化分级制备螺旋藻多糖 | 第30页 |
| 2.3.4 多糖样品理化性质的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.5 多糖样品红外光谱分析 | 第31-32页 |
| 2.3.6 体外抗氧化活性研究 | 第32页 |
| 2.3.7 体外抑制α-葡萄糖苷酶活性研究 | 第32-33页 |
| 2.4 小结 | 第33-34页 |
| 3 螺旋藻藻蓝蛋白的分离纯化 | 第34-47页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 实验试剂及药品 | 第34-35页 |
| 3.1.3 实验仪器与设备 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 藻蓝蛋白粗提液的制备 | 第35页 |
| 3.2.2 藻蓝蛋白的纯化 | 第35-37页 |
| 3.2.3 分析方法 | 第37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-46页 |
| 3.3.1 盐析法沉淀藻蓝蛋白 | 第37-39页 |
| 3.3.2 双水相萃取纯化藻蓝蛋白工艺条件优化 | 第39-44页 |
| 3.3.3 盐析结合双水相萃取法纯度藻蓝蛋白 | 第44页 |
| 3.3.4 不同纯化方法比较分析 | 第44-46页 |
| 3.4 小结 | 第46-47页 |
| 4 藻蓝蛋白的抗疲劳活性评价 | 第47-57页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第47-48页 |
| 4.1.3 实验试剂及药品 | 第48页 |
| 4.1.4 实验仪器与设备 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 实验动物分组 | 第48-49页 |
| 4.2.2 力竭游泳实验 | 第49页 |
| 4.2.3 运动后小鼠的生化指标测定 | 第49页 |
| 4.2.4 常压耐缺氧实验 | 第49页 |
| 4.2.5 统计学分析 | 第49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 4.3.1 藻蓝蛋白对小鼠体重的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.2 藻蓝蛋白对小鼠力竭游泳时间的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.3 藻蓝蛋白对运动后小鼠血乳酸的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.4 藻蓝蛋白对运动后小鼠血尿素氮的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.5 藻蓝蛋白对运动后小鼠乳酸脱氢酶的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.6 藻蓝蛋白对运动后小鼠肝糖原的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.7 藻蓝蛋白对小鼠耐缺氧时间的影响 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 5 螺旋藻多糖和藻蓝蛋白的降血糖活性评价 | 第57-74页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第57-59页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第57页 |
| 5.1.2 实验动物 | 第57-58页 |
| 5.1.3 实验试剂及药品 | 第58页 |
| 5.1.4 实验仪器与设备 | 第58-59页 |
| 5.1.5 主要试剂配制 | 第59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-62页 |
| 5.2.1 PSP体外细胞实验 | 第59-60页 |
| 5.2.2 糖尿病小鼠模型 | 第60-62页 |
| 5.2.3 统计分析 | 第62页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第62-73页 |
| 5.3.1 螺旋藻多糖对3T3-L1前脂肪细胞活力的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.2 螺旋藻多糖对3T3-L1前脂肪细胞脂滴积累的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.3 螺旋藻多糖对3T3-L1脂肪细胞胰岛素抵抗模型葡糖糖摄取的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.4 糖尿病小鼠体重的测定 | 第65-66页 |
| 5.3.5 糖尿病小鼠空腹血糖值(FBG)的测定 | 第66-67页 |
| 5.3.6 糖尿病小鼠口服葡萄糖耐量(OGTT)的测定 | 第67-68页 |
| 5.3.7 C-PC_Ⅲ、PSP和CPM对糖尿病小鼠血脂水平的影响 | 第68-69页 |
| 5.3.8 C-PC_Ⅲ、PSP3和CPM对糖尿病小鼠胰岛素和胰岛素抵抗指数的影响 | 第69-71页 |
| 5.3.9 C-PC_Ⅲ、PSP3和CPM对糖尿病小鼠氧化应激指标的影响 | 第71-73页 |
| 5.4 小结 | 第73-74页 |
| 6 结论与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 结论 | 第74-75页 |
| 6.2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 攻读学位期间发表学术论文目录 | 第88-89页 |
