| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第14-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-21页 |
| 1.1 黄芪发酵的研究概述 | 第15-18页 |
| 1.1.1 发酵黄芪的菌种 | 第15-16页 |
| 1.1.2 发酵黄芪中有效成分变化分析 | 第16页 |
| 1.1.3 发酵黄芪的药理作用 | 第16-18页 |
| 1.2 树突状细胞 | 第18-19页 |
| 1.2.1 树突状细胞的来源与分类 | 第18页 |
| 1.2.2 树突状细胞的体外诱导与培养 | 第18页 |
| 1.2.3 黄芪多糖对树突状细胞影响的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第19-21页 |
| 第二章 发酵黄芪多糖的制备 | 第21-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.1 发酵黄芪 | 第21页 |
| 2.1.2 主要是试剂及仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 实验材料的准备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 发酵黄芪多糖和黄芪多糖的的提取与纯化 | 第21-22页 |
| 2.2.2 FAPS和APS的含量测定 | 第22页 |
| 2.2.3 FAPS和APS的纯化 | 第22页 |
| 2.2.4 内毒素含量的测定 | 第22页 |
| 2.3 结果 | 第22-23页 |
| 2.3.1 多糖纯度检测结果 | 第22-23页 |
| 2.3.2 多糖得率检测结果 | 第23页 |
| 2.3.3 内毒素含量的测定结果 | 第23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-24页 |
| 2.5 小结 | 第24-25页 |
| 第三章 小鼠骨髓源CD103~+DC分离培养及LPS对其形态与功能特征影响研究 | 第25-35页 |
| 3.1 材料 | 第25页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第25页 |
| 3.1.3 主要仪器及设备 | 第25页 |
| 3.2 方法 | 第25-27页 |
| 3.2.1 完全培养基配制 | 第25页 |
| 3.2.2 小鼠骨髓源细胞的培养 | 第25-26页 |
| 3.2.3 CD103~+DC的鉴定 | 第26页 |
| 3.2.4 CD103~+DC细胞功能鉴定 | 第26-27页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第27页 |
| 3.3 结果 | 第27-32页 |
| 3.3.1 骨髓源树突状细胞形态变化 | 第27-29页 |
| 3.3.2 CD103~+DC表面特征分子CD103表达情况 | 第29-30页 |
| 3.3.3 CD103~+DC吞噬能力与抗原提呈相关分子表达的评价 | 第30-32页 |
| 3.3.4 CD103~+DC刺激T细胞增殖的能力 | 第32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-34页 |
| 3.5 小结 | 第34-35页 |
| 第四章 发酵黄芪多糖对小鼠骨髓源CD103~+DC成熟的影响 | 第35-49页 |
| 4.1 实验材料 | 第35页 |
| 4.1.1 中药材 | 第35页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第35页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第35页 |
| 4.1.4 主要仪器与设备 | 第35页 |
| 4.2 方法步骤 | 第35-38页 |
| 4.2.1 小鼠骨髓源CD103~+DC的体外分离与培养 | 第35页 |
| 4.2.2 倒置显微镜观察FAPS对小鼠骨髓源CD103~+DC形态的影响 | 第35-36页 |
| 4.2.3 扫描电镜观察FAPS对小鼠骨髓源CD103~+DC形态的影响 | 第36页 |
| 4.2.4 ELISA检测CD103~+DC相关细胞因子的分泌 | 第36页 |
| 4.2.5 实时荧光定量PCR检测CD103~+DC相关细胞因子的mRNA | 第36-37页 |
| 4.2.6 流式细胞术检测FAPS对CD103~+DC表面分子影响 | 第37-38页 |
| 4.2.7 MTT法检测FAPS促进T细胞增值作用 | 第38页 |
| 4.2.8 统计学分析 | 第38页 |
| 4.3 结果 | 第38-47页 |
| 4.3.1 不同药物作用后CD103~+DC的形态变化 | 第38-40页 |
| 4.3.2 不同药物对CD103~+DC分泌相关细胞因子水平的影响结果 | 第40-42页 |
| 4.3.3 RT-qPCR检测FAPS对CD103~+DC相关细胞因子mRNA表达的影响 | 第42-44页 |
| 4.3.4 CD103~+DC表型 | 第44-47页 |
| 4.3.5 混合淋巴细胞反应 | 第47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-48页 |
| 4.5 小结 | 第48-49页 |
| 第五章 FAPS诱导CD103~+DC成熟相关信号通路的分析 | 第49-54页 |
| 5.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第49页 |
| 5.1.2 实验药物 | 第49页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第49页 |
| 5.1.4 主要仪器与设备 | 第49页 |
| 5.1.5 主要试剂的配置 | 第49-50页 |
| 5.2 试验方法 | 第50-51页 |
| 5.2.1 小鼠骨髓源CD103~+DC的体外培养 | 第50页 |
| 5.2.2 FAPS等刺激CD103~+DC成熟 | 第50页 |
| 5.2.3 相关信号通路的mRNA检测 | 第50页 |
| 5.2.4 相关信号通路的蛋白检测 | 第50-51页 |
| 5.3 结果 | 第51-53页 |
| 5.3.1 信号相关通路的mRNA变化 | 第51-52页 |
| 5.3.2 WB实验结果 | 第52-53页 |
| 5.4 讨论 | 第53页 |
| 5.5 小结 | 第53-54页 |
| 第六章 全文结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简历 | 第62页 |
