| 致谢 | 第4-9页 |
| 常用缩写词 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 猪伪狂犬病 | 第11页 |
| 1.2 PRV的形态结构和理化特性 | 第11-12页 |
| 1.2.1 PRV的形态结构 | 第11-12页 |
| 1.2.2 PRV的理化特性 | 第12页 |
| 1.2.3 PRV细胞培养特性 | 第12页 |
| 1.3 PRV的毒力 | 第12-13页 |
| 1.4 PRV感染特点 | 第13页 |
| 1.5 PR流行病学 | 第13-15页 |
| 1.5.1 易感动物 | 第14页 |
| 1.5.2 传染源 | 第14页 |
| 1.5.3 传播途径 | 第14页 |
| 1.5.4 流行经过 | 第14-15页 |
| 1.5.5 流行特点 | 第15页 |
| 1.6 PRV的致病机理 | 第15-16页 |
| 1.7 PR临床症状 | 第16-17页 |
| 1.8 PR的诊断技术 | 第17-20页 |
| 1.8.1 病毒分离 | 第17-18页 |
| 1.8.1.1 细胞培养 | 第17页 |
| 1.8.1.2 动物接种试验 | 第17-18页 |
| 1.8.2 血清学诊断 | 第18页 |
| 1.8.2.1 中和试验（SN） | 第18页 |
| 1.8.2.2 酶联免疫吸附试验（ELISA） | 第18页 |
| 1.8.2.3 免疫荧光抗体试验（FA） | 第18页 |
| 1.8.3 核酸探针技术 | 第18-19页 |
| 1.8.4 PCR技术 | 第19-20页 |
| 前言 | 第20-21页 |
| 试验一 广东省猪伪狂犬病流行病学调查 | 第21-30页 |
| 1 引言 | 第21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-24页 |
| 2.1 材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 血清样品 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 2.1.4 引物设计与合成 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 样品准备 | 第22页 |
| 2.2.2 待检血清样品中PRV gE抗体水平的检测 | 第22-23页 |
| 2.2.3 血清样品中PRV-g B抗体水平的检测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 组织DNA提取 | 第24页 |
| 2.2.5 组织中g E基因扩增 | 第24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-28页 |
| 3.1 2014年广东省PRV-gE抗体检测结果 | 第24-25页 |
| 3.1.1 不同地区送检血清的PRV-gE抗体阳性率 | 第24-25页 |
| 3.1.2 不同时间送检血清的PRV-gE抗体阳性率 | 第25页 |
| 3.2 2014年广东省PRV-g B抗体检测结果 | 第25-26页 |
| 3.2.1 不同地区送检血清的PRV-gB抗体阳性率 | 第25-26页 |
| 3.2.2 不同时间送检血清的PRV-gB抗体阳性率 | 第26页 |
| 3.3 2014年广东省PR抗原检测结果 | 第26-28页 |
| 3.3.1 不同地区送检样品PR抗原阳性率 | 第26-27页 |
| 3.3.2 不同时间送检样品PR抗原阳性率 | 第27-28页 |
| 4 结论与讨论 | 第28-30页 |
| 4.1 gE-ELISA和抗原检测结果讨论 | 第28-29页 |
| 4.2 gB-ELISA检测结果讨论 | 第29-30页 |
| 试验二 猪伪狂犬病毒的分离鉴定及其gE、TK全基因序列遗传变异分析 | 第30-46页 |
| 1 引言 | 第30页 |
| 2.材料和方法 | 第30-32页 |
| 2.1 材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 病料来源与处理 | 第30页 |
| 2.1.2 细胞 | 第30页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.4 试剂及培养基 | 第30-31页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第31页 |
| 2.2 方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 引物的合成 | 第31页 |
| 2.2.2 细胞培养及接毒 | 第31页 |
| 2.2.3 PCR扩增 | 第31-32页 |
| 2.2.4 序列测定 | 第32页 |
| 2.2.5 生物信息学分析 | 第32页 |
| 2.2.6 动物试验 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-44页 |
| 3.1 细胞分离培养 | 第32页 |
| 3.2 PCR扩增结果 | 第32-34页 |
| 3.3 序列测定结果及分析 | 第34-44页 |
| 3.3.1 gE基因的核苷酸及氨基酸序列同源性分析 | 第34-36页 |
| 3.3.2 猪伪狂犬病毒g E基因的遗传进化分析 | 第36-37页 |
| 3.3.3 gE基因氨基酸主要变异位点分析 | 第37-40页 |
| 3.3.4 猪伪狂犬病毒TK基因的核苷酸及氨基酸序列同源性分析 | 第40-41页 |
| 3.3.5 猪伪狂犬病毒TK基因的遗传进化分析 | 第41-42页 |
| 3.3.6 TK基因氨基酸主要变异位点分析 | 第42-43页 |
| 3.3.7 动物试验结果 | 第43-44页 |
| 4 结论与讨论 | 第44-46页 |
| 4.1 gE全基因序列遗传变异讨论 | 第44-45页 |
| 4.2 TK全基因序列遗传变异讨论 | 第45-46页 |
| 试验三 猪伪狂犬病排毒情况与gE、gB抗体水平的关系研究 | 第46-60页 |
| 1 引言 | 第46-47页 |
| 2 材料与方法 | 第47-48页 |
| 2.1 材料 | 第47页 |
| 2.1.1 血清样品 | 第47页 |
| 2.1.2 试剂 | 第47页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第47页 |
| 2.1.4 引物设计与合成 | 第47页 |
| 2.2 方法 | 第47-48页 |
| 2.2.1 各样品的采集方法 | 第47页 |
| 2.2.2 样品的处理 | 第47-48页 |
| 2.2.3 血清中gE、gB抗体检测 | 第48页 |
| 2.2.4 病毒DNA的提取 | 第48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-58页 |
| 3.1 ELISA检测结果 | 第48-49页 |
| 3.1.1 不同阶段不同猪群血清样品的PRV-g E ELISA抗体检测结果 | 第48页 |
| 3.1.2 不同阶段不同猪群血清样品PRV-g B ELISA抗体检测结果 | 第48-49页 |
| 3.2 不同阶段猪群不同样品PRV-Ag PCR检测结果 | 第49页 |
| 3.3 不同阶段不同猪群的排毒情况与gE、gB抗体水平的关系 | 第49-58页 |
| 4 结论与讨论 | 第58-60页 |
| 4.1 阳性猪场排毒情况与gE、gB抗体水平之间关系的讨论 | 第58页 |
| 4.2 阴性猪场检测结果的讨论 | 第58-59页 |
| 4.3 关于猪伪狂病疫苗免疫的思考 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| ABSTRACT | 第65-66页 |
