| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第16-47页 |
| 1.1 苯酚污染途径及其治理现状 | 第16-20页 |
| 1.1.1 苯酚化合物结构特征及其化学性质 | 第16-17页 |
| 1.1.2 苯酚化合物的生物学毒性 | 第17-18页 |
| 1.1.3 苯酚污染的形成 | 第18页 |
| 1.1.4 苯酚污染的处置方法 | 第18-20页 |
| 1.2 苯酚降解微生物类型及其降解途径 | 第20-26页 |
| 1.2.1 苯酚降解菌株的主要类型 | 第20-22页 |
| 1.2.2 苯酚降解菌株的代谢机理 | 第22-24页 |
| 1.2.3 苯酚生物降解的共基质作用 | 第24-26页 |
| 1.3 苯酚降解相关的氧化酶类别 | 第26-33页 |
| 1.3.1 氯过氧化物酶 | 第26-28页 |
| 1.3.2 苯酚羟化酶 | 第28-30页 |
| 1.3.3 邻苯二酚 2,3-双加氧酶 | 第30-32页 |
| 1.3.4 邻苯二酚 1,2-双加氧酶 | 第32-33页 |
| 1.4 苯酚降解生物反应动力学模型 | 第33-40页 |
| 1.4.1 苯酚降解动力学模型类型 | 第33-34页 |
| 1.4.2 难降解物质共代谢的动力学模型 | 第34-37页 |
| 1.4.3 存在生长基质和能源物质条件下的共代谢动力学模型 | 第37-38页 |
| 1.4.4 苯酚降解模型 | 第38-40页 |
| 1.5 苯酚降解微生物的混合培养 | 第40-43页 |
| 1.5.1 基于共基质效应的混合培养 | 第40-41页 |
| 1.5.2 基于生态环境稳定性的混合培养 | 第41页 |
| 1.5.3 基于微生物类群的混合培养 | 第41-43页 |
| 1.6 本论文研究的目的和意义 | 第43-47页 |
| 1.6.1 研究目的及意义 | 第43-44页 |
| 1.6.2 研究目标 | 第44页 |
| 1.6.3 研究内容 | 第44-45页 |
| 1.6.4 拟解决的关键问题 | 第45页 |
| 1.6.5 拟采取的研究方法和技术路线 | 第45-46页 |
| 1.6.6 特色创新 | 第46-47页 |
| 第二章 含 CatA 及 CatO_2ase 加氧酶苯酚降解菌筛选及鉴定 | 第47-71页 |
| 2.1 引言 | 第47-48页 |
| 2.2 材料与方法 | 第48-56页 |
| 2.2.1 培养基 | 第48-49页 |
| 2.2.2 菌种分子生物学鉴定试剂 | 第49页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第49-50页 |
| 2.2.4 菌种分离样品的采集及其预处理 | 第50页 |
| 2.2.5 活性污泥的驯化培养 | 第50-51页 |
| 2.2.6 苯酚降解菌株的分离及纯化 | 第51页 |
| 2.2.7 菌株的鉴定 | 第51-53页 |
| 2.2.8 筛选菌株的苯酚降解特性测试 | 第53页 |
| 2.2.9 实验检测方法 | 第53-56页 |
| 2.2.10 实验数据统计分析 | 第56页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第56-70页 |
| 2.3.1 驯化方式对富集菌共基质效应的影响 | 第56-57页 |
| 2.3.2 苯酚耐受菌株的筛选 | 第57-59页 |
| 2.3.3 降解菌的形态特征鉴别 | 第59-60页 |
| 2.3.4 菌株降解苯酚特征 | 第60-61页 |
| 2.3.5 筛选菌株的加氧酶类别的鉴别 | 第61-62页 |
| 2.3.6 共代谢物对菌株的降解能力的影响 | 第62-64页 |
| 2.3.7 降解菌株对高浓度苯酚的耐受性测试 | 第64页 |
| 2.3.8 筛选菌种的细胞形态特征 | 第64-66页 |
| 2.3.9 筛选菌株的分子生物学特性鉴定 | 第66-68页 |
| 2.3.10 菌株生长及苯酚降解曲线 | 第68-70页 |
| 2.4 本章结论 | 第70-71页 |
| 第三章 CPO 的发酵生产提纯及固定化 | 第71-86页 |
| 3.1 引言 | 第71-72页 |
| 3.2 材料与方法 | 第72-76页 |
| 3.2.1 菌种 | 第72页 |
| 3.2.2 培养基 | 第72页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第72页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第72-73页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第73-75页 |
| 3.2.6 实验测定方法 | 第75-76页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第76-84页 |
| 3.3.1 PEG6,00 添加量对 CPO 发酵液预处理效果的影响 | 第76-77页 |
| 3.3.2 (NH4)2SO4分段盐析对 PEG6,000 共沉淀后 CPO 得率的影响 | 第77页 |
| 3.3.3 PEG6,000 与磷酸盐双水相体系对 CPO 的分配系数影响 | 第77-78页 |
| 3.3.4 外加 NaCl 对 CPO 分配系数的影响 | 第78-79页 |
| 3.3.5 双水相体系 pH 对 CPO 分配系数的影响 | 第79-80页 |
| 3.3.6 CPO 双水相萃取液凝胶层析 | 第80-82页 |
| 3.3.7 固定化酶的活力回收试验 | 第82页 |
| 3.3.8 复合凝胶固定化 CPO 的酶活力稳定性测试 | 第82-83页 |
| 3.3.9 CPO 添加量对固定化酶对反应性能的影响 | 第83-84页 |
| 3.4 本章结论 | 第84-86页 |
| 第四章 基于加氧酶类别的苯酚降解菌株复合条件优化 | 第86-97页 |
| 4.1 引言 | 第86页 |
| 4.2 材料与方法 | 第86-88页 |
| 4.2.1 材料 | 第86页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第86-88页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第88-96页 |
| 4.3.1 苯酚降解菌株复合比例的确定 | 第88-89页 |
| 4.3.2 复合菌株降解的主效应因素筛选 | 第89-91页 |
| 4.3.3 复合菌系降解条件优化 | 第91-94页 |
| 4.3.4 验证性实验 | 第94-95页 |
| 4.3.5 培养温度对复合菌株苯酚降解率影响 | 第95页 |
| 4.3.6 辅助基质对复合菌株降解苯酚的影响 | 第95-96页 |
| 4.4 本章结论 | 第96-97页 |
| 第五章 固定化 CPO 对苯酚生物转化作用 | 第97-103页 |
| 5.1 引言 | 第97页 |
| 5.2 材料与方法 | 第97-99页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第97-98页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第98页 |
| 5.2.3 检测方法 | 第98-99页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第99-101页 |
| 5.3.1 固定化 CPO 对苯酚的氧化特征 | 第99-100页 |
| 5.3.2 pH 对固定化 CPO 苯酚生物降解性能的影响 | 第100页 |
| 5.3.3 过氧化氢浓度对固定化 CPO 降解苯酚性能的影响 | 第100-101页 |
| 5.4 本章结论 | 第101-103页 |
| 第六章 CPO 对苯酚生物降解的促进作用及其降解动力学 | 第103-115页 |
| 6.1 引言 | 第103页 |
| 6.2 材料与方法 | 第103-105页 |
| 6.2.1 培养基及试剂 | 第103页 |
| 6.2.2 固定化氯过氧化物酶 | 第103页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第103-105页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第105-114页 |
| 6.3.1 固定化 CPO 降解苯酚动力学特征 | 第105-107页 |
| 6.3.2 固定化 CPO 与加氧酶组合菌系处理苯酚比较 | 第107-108页 |
| 6.3.3 加氧酶菌株复合体系对苯酚的降解 | 第108-109页 |
| 6.3.4 固定化 CPO 与复合加氧酶菌株混合体系对苯酚的降解 | 第109-110页 |
| 6.3.5 复合降解体系苯酚降解动力学特征 | 第110-111页 |
| 6.3.6 复合降解体系动力学模型拟合 | 第111-113页 |
| 6.3.7 基于氧化酶-菌复合体系对苯酚协同降解机制探讨 | 第113-114页 |
| 6.4 本章结论 | 第114-115页 |
| 第七章 结论与展望 | 第115-119页 |
| 7.1 实验结论 | 第115-117页 |
| 7.2 创新性 | 第117-118页 |
| 7.3 存在的不足及展望 | 第118-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-130页 |
| 附录 | 第130-141页 |
| 附录1 L2 菌的 16srDNA 测序结果 | 第130-131页 |
| 附录2 L6 菌的 16srDNA 测序结果 | 第131-132页 |
| 附录3 Sequence producing significant alignments for L2 16sRNA gene | 第132-134页 |
| 附录4 Sequence producing significant alignments for L6 16sRNA gene | 第134-141页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第141页 |
