| 摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 缩略语 | 第17-19页 |
| 前言 | 第19-29页 |
| 1 伊马替尼概述 | 第19-22页 |
| 1.1 伊马替尼药理作用及临床应用 | 第19-20页 |
| 1.2 伊马替尼治疗宫颈癌研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3 伊马替尼对抗癌药的化疗增敏作用 | 第21-22页 |
| 2 脂质体的应用 | 第22-27页 |
| 2.1 脂质体在抗肿瘤治疗中的应用 | 第22-24页 |
| 2.2 叶酸受体在肿瘤靶向治疗中的应用 | 第24-25页 |
| 2.3 复方脂质体在抗肿瘤治疗中的应用 | 第25-26页 |
| 2.4 pH敏感脂质体在抗肿瘤治疗中的应用 | 第26-27页 |
| 3. 立项依据和研究内容 | 第27-29页 |
| 3.1 立项依据 | 第27页 |
| 3.2 研究内容 | 第27-29页 |
| 第一章 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体的处方工艺研究 | 第29-41页 |
| 1. 仪器和材料 | 第29-30页 |
| 1.1 仪器 | 第29页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第29-30页 |
| 2. 实验方法 | 第30-33页 |
| 2.1 分析方法的建立 | 第30-32页 |
| 2.2 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体(FLI)的制备 | 第32-33页 |
| 3. 结果和讨论 | 第33-40页 |
| 3.1 分析方法的建立 | 第33-36页 |
| 3.2 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体(FLI)的制备 | 第36-40页 |
| 4. 小结 | 第40-41页 |
| 第二章 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体的理化性质和稳定性研究 | 第41-50页 |
| 1. 仪器和材料 | 第41页 |
| 1.1 仪器 | 第41页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第41页 |
| 2. 实验方法 | 第41-44页 |
| 2.1 外观检查及pH检查 | 第41-42页 |
| 2.2 透射电镜观察脂质体形态 | 第42页 |
| 2.3 粒径和电位的测定 | 第42页 |
| 2.4 脂质体在不同pH溶液中的体外释放 | 第42-43页 |
| 2.5 脂质体的储存稳定性考察 | 第43-44页 |
| 3. 结果和讨论 | 第44-49页 |
| 3.1 外观及pH检查 | 第44页 |
| 3.2 透射电镜观察FLI显微形态 | 第44-45页 |
| 3.3 粒径和电位的测定 | 第45-47页 |
| 3.4 体外释放考察 | 第47-48页 |
| 3.5 储存稳定性考察 | 第48-49页 |
| 4. 小结 | 第49-50页 |
| 第三章 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体的体外评价 | 第50-60页 |
| 1. 仪器和材料 | 第50-51页 |
| 1.1 仪器 | 第50页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第50-51页 |
| 2. 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.1 细胞的培养和传代 | 第51-52页 |
| 2.2 细胞摄取实验 | 第52-53页 |
| 2.3 细胞增殖抑制实验 | 第53-54页 |
| 2.4 细胞凋亡实验 | 第54页 |
| 3. 结果和讨论 | 第54-59页 |
| 3.1 细胞摄取实验结果 | 第54-56页 |
| 3.2 细胞增殖抑制实验结果 | 第56-57页 |
| 3.3 细胞凋亡实验结果 | 第57-59页 |
| 4. 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 叶酸受体靶向伊马替尼脂质体在小鼠体内的药代动力学研究 | 第60-68页 |
| 1. 仪器和材料 | 第60-61页 |
| 1.1 仪器 | 第60页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第60-61页 |
| 1.3 实验动物 | 第61页 |
| 2. 实验方法 | 第61-63页 |
| 2.1 HPLC法测定小鼠血浆样品中伊马替尼(IM)含量的方法学研究 | 第61-62页 |
| 2.2 动物实验 | 第62页 |
| 2.3 药动学分析 | 第62-63页 |
| 3. 结果和讨论 | 第63-66页 |
| 3.1 HPLC法测定小鼠血浆样品中伊马替尼(IM)含量的方法学 | 第63-64页 |
| 3.2 药动学实验结果 | 第64-66页 |
| 4. 小结 | 第66-68页 |
| 第五章 伊马替尼增强宫颈癌Hela细胞对阿霉素的化疗敏感性研究 | 第68-76页 |
| 1. 仪器和材料 | 第68-69页 |
| 1.1 仪器 | 第68页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第68-69页 |
| 2. 实验方法 | 第69-70页 |
| 2.1 细胞的培养和传代(见第三章) | 第69页 |
| 2.2 MTT法考察伊马替尼和阿霉素分别作用于Hela细胞的增殖抑制率 | 第69页 |
| 2.3 MTT法考察不同比例伊马替尼和阿霉素联用于Hela细胞的增殖抑制率 | 第69-70页 |
| 2.4 半效法评价伊马替尼和阿霉素联合作用于Hela细胞的作用效果 | 第70页 |
| 3. 结果与讨论 | 第70-75页 |
| 3.1 不同浓度的伊马替尼和阿霉素对Hela细胞的增殖抑制作用 | 第70-71页 |
| 3.2 不同比例的伊马替尼和阿霉素联合作用于Hela细胞的增殖抑制作用 | 第71-73页 |
| 3.3 半效法评价伊马替尼和阿霉素的联用效果 | 第73-75页 |
| 4. 小结 | 第75-76页 |
| 第六章 叶酸受体靶向阿霉素-伊马替尼复方脂质体的处方工艺研究 | 第76-90页 |
| 1. 仪器和材料 | 第76-77页 |
| 1.1 仪器 | 第76页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第76-77页 |
| 2. 实验方法 | 第77-81页 |
| 2.1 分析方法的建立 | 第77-79页 |
| 2.2 叶酸受体靶向阿霉素-伊马替尼复方脂质体(FLDI)的制备 | 第79页 |
| 2.3 叶酸受体靶向阿霉素-伊马替尼复方pH敏感脂质体(FPLDI)的制备 | 第79-81页 |
| 3. 结果与讨论 | 第81-89页 |
| 3.1 分析方法的建立 | 第81-84页 |
| 3.2 FLDI处方工艺考察 | 第84-85页 |
| 3.3 FPLDI处方工艺考察 | 第85-89页 |
| 4. 小结 | 第89-90页 |
| 第七章 叶酸受体靶向阿霉素-伊马替尼复方脂质体的理化性质和稳定性研究 | 第90-104页 |
| 1 仪器和材料 | 第90-91页 |
| 1.1 仪器 | 第90页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第90-91页 |
| 2. 实验方法 | 第91-93页 |
| 2.1 外观检查及pH检查 | 第91页 |
| 2.2 透射电镜观察脂质体形态 | 第91页 |
| 2.3 粒径和电位的测定 | 第91页 |
| 2.4 脂质体在不同pH溶液中的体外释放 | 第91-92页 |
| 2.5 不同pH溶液中脂质体的融合性能 | 第92-93页 |
| 2.6 脂质体的储存稳定性考察 | 第93页 |
| 3. 结果和讨论 | 第93-103页 |
| 3.1 外观及pH检查 | 第93-94页 |
| 3.2 透射电镜观察脂质体形态 | 第94页 |
| 3.3 粒径和电位的测定 | 第94-96页 |
| 3.4 体外释放考察 | 第96-99页 |
| 3.5 不同pH值条件下脂质体的融合性能 | 第99-102页 |
| 3.6 储存稳定性考察 | 第102-103页 |
| 4. 小结 | 第103-104页 |
| 第八章 叶酸受体靶向阿霉素-伊马替尼复方脂质体的体外评价 | 第104-113页 |
| 1. 仪器和材料 | 第104-105页 |
| 1.1 仪器 | 第104页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第104-105页 |
| 2. 实验方法 | 第105-106页 |
| 2.1 细胞摄取实验 | 第105-106页 |
| 2.2 细胞增殖抑制实验 | 第106页 |
| 3. 结果和讨论 | 第106-112页 |
| 3.1 细胞摄取实验结果 | 第106-110页 |
| 3.2 细胞增殖抑制实验结果 | 第110-112页 |
| 4. 小结 | 第112-113页 |
| 全文总结 | 第113-117页 |
| 1. 论文主要研究结果 | 第113-115页 |
| 2. 创新点 | 第115页 |
| 3. 存在不足和展望 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-122页 |
| 综述 基于纳米制剂的抗肿瘤药物联合治疗 | 第122-134页 |
| 参考文献 | 第130-134页 |
| 致谢 | 第134-135页 |
| 攻读博士期间发表和拟发表的论文 | 第135页 |
