| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 第一章 大鼠局灶性脑缺血后MIR-376B-5P表达及血管新生情况 | 第19-40页 |
| 1.1 材料与方法 | 第19-32页 |
| 1.1.1 主要实验材料 | 第19-20页 |
| 1.1.2 主要实验设备 | 第20页 |
| 1.1.3 主要溶液配制 | 第20-21页 |
| 1.1.4 实验动物 | 第21-22页 |
| 1.1.5 大鼠永久性局灶性大脑中动脉脑缺血(pMCAO)模型的建立 | 第22页 |
| 1.1.6 动物实验分组 | 第22-23页 |
| 1.1.7 脑组织标本的制备 | 第23页 |
| 1.1.8 TTC染色法 | 第23页 |
| 1.1.9 免疫组织化学方法 | 第23-25页 |
| 1.1.10 实时荧光定量PCR方法 | 第25-30页 |
| 1.1.11 Western blot方法 | 第30-32页 |
| 1.1.12 统计学分析 | 第32页 |
| 1.2 结果 | 第32-40页 |
| 1.2.1 大鼠永久性局灶性大脑中动脉脑缺血(pMCAO)模型TTC染色结果 | 第32-33页 |
| 1.2.2 大鼠pMCAO模型脑梗死组织中vWF表达情况 | 第33-34页 |
| 1.2.3 大鼠pMCAO模型脑梗死组织中miR-376b-5p的表达 | 第34-35页 |
| 1.2.4 大鼠pMCAO模型脑梗死组织中HIF-1α,VEGFA,Notch1在mRNA水平的表达 | 第35-37页 |
| 1.2.5 大鼠pMCAO模型脑梗死组织中HIF-1α,VEGFA,Notch1在蛋白水平的表达 | 第37-40页 |
| 第二章 HUVEC细胞缺氧后MIR-376B-5P表达及血管新生情况 | 第40-59页 |
| 2.1 材料与方法 | 第40-51页 |
| 2.1.1 主要实验材料 | 第40-41页 |
| 2.1.2 主要实验设备 | 第41页 |
| 2.1.3 HUVEC细胞培养及细胞缺氧模型的制备 | 第41-43页 |
| 2.1.4 实时荧光定量PCR方法 | 第43-47页 |
| 2.1.5 Western blot方法 | 第47-50页 |
| 2.1.6 MTT试验 | 第50页 |
| 2.1.7 内皮细胞小管形成实验 | 第50页 |
| 2.1.8 细胞迁移实验 | 第50-51页 |
| 2.1.9 统计学分析 | 第51页 |
| 2.2 结果 | 第51-59页 |
| 2.2.1 缺氧后HUVEC细胞中miR-376b-5p在mRNA水平的表达变化 | 第51-52页 |
| 2.2.2 缺氧对HUVEC细胞增殖的影响 | 第52页 |
| 2.2.3 缺氧对HUVEC细胞小管形成的影响 | 第52-53页 |
| 2.2.4 缺氧对HUVEC细胞迁移能力的影响 | 第53-54页 |
| 2.2.5 缺氧对HUVEC细胞中HIF-1α,VEGFA,Notch1 mRNA表达的影响 | 第54-56页 |
| 2.2.6 缺氧对HUVEC细胞中HIF-1α,VEGFA,Notch1蛋白表达的影响 | 第56-59页 |
| 第三章 转染MIR-376B-5P模拟物及抑制物对HUVEC细胞血管新生的影响 | 第59-70页 |
| 3.1 材料与方法 | 第59-61页 |
| 3.1.1 主要实验材料 | 第59-60页 |
| 3.1.2 主要实验设备 | 第60页 |
| 3.1.3 实验分组 | 第60页 |
| 3.1.4 细胞转染 | 第60-61页 |
| 3.1.5 其余实验方法 | 第61页 |
| 3.2 结果 | 第61-70页 |
| 3.2.1 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后,细胞内miR-376b-5p的表达情况 | 第61-62页 |
| 3.2.2 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后对细胞增殖的影响 | 第62-63页 |
| 3.2.3 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后对细胞小管形成的影响 | 第63-64页 |
| 3.2.4 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后对细胞迁移能力的影响 | 第64-65页 |
| 3.2.5 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后对细胞中HIF-1α,VEGFA,Notch1 mRNA表达的影响 | 第65-67页 |
| 3.2.6 miR-376b-5p模拟物或抑制物转染HUVEC细胞后对细胞中HIF-1α,VEGFANotch1蛋白表达的影响 | 第67-70页 |
| 第四章 MIR-376B-5P影响血管新生的机制研究 | 第70-84页 |
| 4.1 材料与方法 | 第70-71页 |
| 4.1.1 主要实验材料及设备 | 第70页 |
| 4.1.2 实验分组 | 第70页 |
| 4.1.3 细胞转染 | 第70-71页 |
| 4.1.4 其余实验方法 | 第71页 |
| 4.2 结果 | 第71-84页 |
| 4.2.1 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后,细胞内HIF-1α的表达情况 | 第71-75页 |
| 4.2.2 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后,细胞内miR-376b-5p的表达情况 | 第75-76页 |
| 4.2.3 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后对细胞增殖的影响 | 第76-77页 |
| 4.2.4 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后对细胞小管形成的影响 | 第77-78页 |
| 4.2.5 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后对细胞迁移能力的影响 | 第78-79页 |
| 4.2.6 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后对细胞中VEGFA,Notch1 mRNA表达的影响 | 第79-81页 |
| 4.2.7 HIF-1α shRNA转染HUVEC细胞后对细胞中VEGFA,Notch1蛋白表达的影响 | 第81-84页 |
| 讨论 | 第84-93页 |
| 结论 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-103页 |
| 综述 | 第103-121页 |
| 参考文献 | 第111-121页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122页 |
