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持久饥饿对日本三角涡虫细胞形态结构、生化代谢和基因表达的影响

摘要第4-8页
ABSTRACT第8-12页
目录第13-17页
缩略语第17-18页
1 前言第18-32页
    1.1 淡水涡虫简介第18-19页
    1.2 饥饿对涡虫组织结构、细胞形态和基因表达的影响第19-21页
        1.2.1 涡虫生长和退行生长第19-20页
        1.2.2 饥饿对涡虫组织结构和细胞形态的影响第20页
        1.2.3 饥饿对涡虫干细胞及干细胞相关基因表达的影响第20-21页
    1.3 饥饿生理学研究进展第21-25页
        1.3.1 饥饿对动物体重和组织器官结构的影响第22-23页
        1.3.2 饥饿对动物生理代谢的影响第23-25页
    1.4 饥饿诱导的细胞死亡方式及其分子机制第25-29页
        1.4.1 细胞自溶及其演变和发展第25-27页
        1.4.2 细胞自噬及其分子机制第27-28页
        1.4.3 饥饿诱导细胞凋亡的分子机制第28-29页
    1.5 课题提出的意义和主要研究内容第29-32页
2 材料与方法第32-58页
    2.0 实验动物及处理第32页
    2.1 主要仪器第32-33页
    2.2 主要试剂及配制第33-34页
    2.3 实验方法第34-58页
        2.3.1 石蜡切片制备和HE染色第34-35页
        2.3.2 透射电镜样品制备第35页
        2.3.3 蛋白质浓度的测定第35-36页
        2.3.4 SDS-PAGE电泳第36-37页
        2.3.5 Western-blot第37-38页
        2.3.6 转氨酶、乳酸脱氢酶和肌酸激酶活性的测定第38页
        2.3.7 丙二醛含量、超氧化物歧化酶和过氧化氢酶活性的测定第38页
        2.3.8 磷酸酶活性电泳第38-39页
        2.3.9 蛋白水解酶活性电泳第39页
        2.3.10 总RNA提取和cDNA合成第39-40页
        2.3.11 半定量PCR检测PCNA mRNA的表达变化第40-41页
        2.3.12 基因组DNA提取第41-42页
        2.3.13 质粒DNA提取第42-43页
        2.3.14 JM109和BL21感受态细胞的制备第43页
        2.3.15 mRNA差异显示技术筛选饥饿诱导上调表达的ESTs第43-44页
        2.3.16 cDNA片段的纯化、克隆载体的连接及转化第44-45页
        2.3.17 双向电泳-差异蛋白质组学分析第45-46页
        2.3.18 DjHSP90 cDNA全长克隆第46-47页
        2.3.19 DjGRP78 cDNA全长克隆第47-48页
        2.3.20 DjHSP40 cDNA全长克隆第48-49页
        2.3.21 实时荧光定量PCR第49-50页
        2.3.22 DjHSP90抗血清制备第50-54页
        2.3.23 DjHSP70抗血清制备第54-56页
        2.3.24 免疫组化技术第56-57页
        2.3.25 细胞大小的测量第57页
        2.3.26 涡虫整体免疫组化技术第57-58页
3 结果第58-94页
    3.1 持久饥饿对日本三角涡虫组织结构、细胞形态的影响第58-62页
    3.2 持久饥饿对日本三角涡虫体内6种酶活性的影响第62-64页
        3.2.1 持久饥饿对日本三角涡虫转氨酶活性的影响第62页
        3.2.2 持久饥饿对日本三角涡虫磷酸酶活性的影响第62-63页
        3.2.3 持久饥饿对日本三角涡虫蛋白水解酶活性的影响第63页
        3.2.4 持久饥饿对日本三角涡虫肌酸激酶和乳酸脱氢酶活性的影响第63-64页
    3.3 持久饥饿对日本三角涡虫干细胞标志基因PCNA表达的影响第64-65页
    3.4 持久饥饿诱导日本三角涡虫上调表达基因的筛选第65-67页
    3.5 持久饥饿诱导日本三角涡虫上调表达蛋白质的筛选第67-70页
    3.6 持久饥饿诱导日本三角涡虫氧化和抗氧化性损伤研究第70-71页
    3.7 日本三角涡虫 DJHSP90/DJGRP78/DJHSP40基因克隆及表达模式第71-85页
        3.7.1 日本三角涡虫 DjHSP90 基因克隆及生物信息学分析第71-76页
        3.7.2 日本三角涡虫DjGRP78基因克隆及生物信息学分析第76-79页
        3.7.3 日本三角涡虫 DjHSP40 基因克隆及生物信息学分析第79-83页
        3.7.4 持久饥饿对DjHSP90、DjGRP78和DjHSP40基因表达的影响第83-85页
    3.8 日本三角涡虫DJHSP90抗血清的制备及原位表达第85-88页
        3.8.1 DjHSP90 C-端多肽表达载体的构建与诱导表达第85-86页
        3.8.2 DjHSP90 C-端多肽融合蛋白的纯化结果第86页
        3.8.3 DjHSP90抗血清特异性检测结果第86-87页
        3.8.4 日本三角涡虫DjHSP90在饥饿涡虫体内的表达模式第87-88页
    3.9 日本三角涡虫DJHSP70抗血清的制备及原位表达第88-94页
        3.9.1 DjHSP70表达载体的构建第88页
        3.9.2 DjHSP70原核表达诱导条件优化第88-89页
        3.9.3 DjHSP70抗血清特异性检测结果第89-90页
        3.9.4 日本三角涡虫DjHSP70在饥饿涡虫体内的表达模式第90-94页
4 讨论第94-104页
    4.1 持久饥饿对日本三角涡虫组织结构、细胞形态的影响分析第94-96页
    4.2 持久饥饿对日本三角涡虫生化代谢的影响分析第96-98页
    4.3 持久饥饿诱导日本三角涡虫氧化和抗氧化性损伤的影响分析第98-99页
    4.4 持久饥饿对日本三角涡虫干细胞相关基因表达的影响分析第99-100页
    4.5 持久饥饿诱导日本三角涡虫热休克蛋白表达的生理意义第100-102页
    4.6 持久饥饿、氧化性损伤、细胞死亡和细胞应激反应之间的关系第102-104页
5 结论第104-106页
参考文献(REFERENCES)第106-128页
致谢第128-130页
攻读博士学位期间参加的科研项目和取得的研究成果清单第130-131页

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