| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩写表 | 第13-14页 |
| 第1章 引言 | 第14-29页 |
| 1.1 植物的种子引发 | 第14-17页 |
| 1.1.1 种子引发的方法 | 第14-15页 |
| 1.1.2 种子引发的条件 | 第15-16页 |
| 1.1.3 种子引发的效应 | 第16-17页 |
| 1.1.3.1. 降低吸胀伤害 | 第16页 |
| 1.1.3.2 引发可修复劣变造成的亚细胞结构的损伤 | 第16页 |
| 1.1.3.3 引发对种子活力及抗逆性的影响 | 第16-17页 |
| 1.1.3.4 提高种子的耐脱水力 | 第17页 |
| 1.1.3.5 种子引发后的生理生化变化 | 第17页 |
| 1.2 海藻糖的研究与应用 | 第17-22页 |
| 1.2.1 海藻糖对植物的生物胁迫的响应 | 第19-20页 |
| 1.2.2 海藻糖对植物的非生物胁迫的响应 | 第20页 |
| 1.2.3 海藻糖在植物中对逆境胁迫应答中可能存在的反应机制 | 第20-22页 |
| 1.2.3.1 海藻糖作为兼容性溶解物 | 第20-21页 |
| 1.2.3.2 海藻糖与细胞的程序性死亡的关系 | 第21页 |
| 1.2.3.3 海藻糖在逆境胁迫中扮演信号分子的作用 | 第21-22页 |
| 1.2.3.4 海藻糖参与抗氧化酶的应答 | 第22页 |
| 1.3 硝普钠(SNP)的研究与应用 | 第22-24页 |
| 1.3.1 NO的理化性质 | 第22-23页 |
| 1.3.2 NO与植物生长发育的关系 | 第23页 |
| 1.3.3 NO与生物胁迫的关系 | 第23-24页 |
| 1.3.4 NO与非生物胁迫 | 第24页 |
| 1.4 脯氨酸代谢与植物逆境的关系 | 第24-26页 |
| 1.4.1 植物脯氨酸生物合成的谷氨酸途径 | 第25页 |
| 1.4.2 植物脯氨酸生物合成的精氨酸／鸟氨酸途径 | 第25-26页 |
| 1.4.3 植物脯氨酸降解途径 | 第26页 |
| 1.4.4 脯氨酸累积的代谢意义 | 第26页 |
| 1.5 技术路线 | 第26-27页 |
| 1.6 研究目的及意义 | 第27-29页 |
| 第2章 材料与方法 | 第29-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.2 种子引发处理 | 第29-30页 |
| 2.2.1 海藻糖（TH）引发处理 | 第29页 |
| 2.2.2 硝普钠（SNP）种子引发处理 | 第29-30页 |
| 2.3 种子萌发实验 | 第30-31页 |
| 2.3.1 种子在正常培养条件下的萌发实验 | 第30页 |
| 2.3.2 种子在干旱胁迫条件下的萌发实验 | 第30页 |
| 2.3.3 种子在低温胁迫条件下的萌发实验 | 第30页 |
| 2.3.4 种子在低温+干旱双重胁迫条件下的萌发实验 | 第30-31页 |
| 2.4 测定方法 | 第31-34页 |
| 2.4.1 种子各项萌发指标计算 | 第31页 |
| 2.4.2 幼苗素质测定 | 第31页 |
| 2.4.3 叶绿素含量的测定 | 第31-32页 |
| 2.4.4 幼苗电解质渗漏率及 TTC 还原力的测定 | 第32页 |
| 2.4.4.1 幼苗电解质渗漏率测定 | 第32页 |
| 2.4.4.2 幼苗 TTC 还原力的测定 | 第32页 |
| 2.4.5 种子引发过程中脯氨酸含量及脯氨酸代谢关键酶活性的测定 | 第32-34页 |
| 2.4.5.1 脯氨酸含量的测定 | 第32-33页 |
| 2.4.5.2 GDH 的提取和测定 | 第33页 |
| 2.4.5.3 P5SC 的提取和测定 | 第33页 |
| 2.4.5.4 0AT的提取和测定 | 第33-34页 |
| 2.4.5.5 精氨酸酶活性的提取和测定 | 第34页 |
| 2.4.5.6 ProDH的提取和测定 | 第34页 |
| 2.5 脯氨酸代谢相关酶基因的 RT-PCR | 第34-36页 |
| 2.5.1 RNA的提取(利用全式金公司的 Transzol Plus 试剂盒) | 第34-35页 |
| 2.5.2 RT-PCR | 第35-36页 |
| 2.6 统计分析 | 第36页 |
| 2.7 主要试剂及仪器 | 第36-37页 |
| 2.7.1 试剂 | 第36页 |
| 2.7.2 仪器 | 第36-37页 |
| 第3章 结果与分析 | 第37-80页 |
| 3.1 海藻糖引发对低温和干旱胁迫下烟草种子及幼苗抗逆性的影响.. | 第37-48页 |
| 3.1.1 PEG 6000 浓度筛选 | 第37-39页 |
| 3.1.1.1 模拟干旱条件的 PEG 6000 浓度选择 | 第37-38页 |
| 3.1.1.2 模拟干旱+低温交叉条件 PEG 6000的浓度选择 | 第38-39页 |
| 3.1.2 TH引发处理对烟草种子萌发的影响 | 第39-43页 |
| 3.1.2.1 TH 引发处理对正常条件下烟草种子萌发的影响 | 第39-40页 |
| 3.1.2.2 TH 引发处理对干旱胁迫下烟草种子萌发的影响 | 第40-41页 |
| 3.1.2.3 TH 引发处理对低温条件下烟草种子萌发的影响 | 第41-42页 |
| 3.1.2.4 TH 引发处理对干旱+低温双重胁迫下烟草种子萌发的影响 | 第42-43页 |
| 3.1.3 TH引发对烟草幼苗在干旱和低温胁迫下幼苗素质的影响 | 第43-44页 |
| 3.1.4 10 mmol·L-1TH引发对烟草幼苗生理素质的影响 | 第44-48页 |
| 3.1.4.1 10 mmol·L-1TH 引发对烟草幼苗总叶绿素含量的影响 | 第44-45页 |
| 3.1.4.2 10 mmol·L-1TH 引发对烟草幼苗电解质渗漏率的影响 | 第45页 |
| 3.1.4.3 10 mmol·L-1TH 引发对烟草幼苗 TTC 还原力的影响 | 第45-48页 |
| 3.2 SNP 引发对低温和干旱胁迫下烟草种子及幼苗抗逆性的影响 | 第48-58页 |
| 3.2.1 SNP引发对烟草种子萌发的影响 | 第48-52页 |
| 3.2.1.1 SNP 引发对在正常条件下烟草种子萌发的影响 | 第48页 |
| 3.2.1.2 SNP 引发对干旱胁迫下烟草种子萌发的影响 | 第48-49页 |
| 3.2.1.3 SNP 引发对低温胁迫下烟草种子萌发的影响 | 第49-51页 |
| 3.2.1.4 SNP 引发对干旱+低温双重胁迫下烟草种子萌发的影响 | 第51-52页 |
| 3.2.2 SNP引发对烟草幼苗在干旱和低温胁迫下生长的缓解效应 | 第52-54页 |
| 3.2.3 100 μmol·L-1SNP引发过程中脯氨酸含量及代谢关键酶活性的变化 | 第54-58页 |
| 3.2.3.1 种子引发过程中 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸含量的变化 | 第54页 |
| 3.2.3.2 100 μmol·L-1SNP 引发的脯氨酸代谢谷氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第54-55页 |
| 3.2.3.3 100 μmol·L-1SNP 引发的脯氨酸代谢鸟氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第55-56页 |
| 3.2.3.4 100 μmol·L-1SNP 引发的脯氨酸代谢降解途径关键酶活性的变化 | 第56-57页 |
| 3.2.3.5 种子引发后脯氨酸代谢关键酶基因的表达情况 | 第57-58页 |
| 3.3 脯氨酸代谢参与 SNP 引发提高烟草种子及幼苗在萌发初期抗旱性和抗冷性的作用 | 第58-80页 |
| 3.3.1 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发的烟草种子及幼苗脯氨酸含量及代谢关键酶活性的变化 | 第58-63页 |
| 3.3.1.1 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸含量的变化 | 第58页 |
| 3.3.1.2 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发的脯氨酸代谢谷氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第58-59页 |
| 3.3.1.3 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的鸟氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第59-60页 |
| 3.3.1.4 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的降解途径关键酶活性的变化 | 第60-61页 |
| 3.3.1.5 常温条件下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢关键酶基因的表达情况 | 第61-63页 |
| 3.3.2 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发的烟草种子及幼苗脯氨酸含量及代谢关键酶活性的变化 | 第63-68页 |
| 3.3.2.1 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸含量的变化 | 第63页 |
| 3.3.2.2 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的谷氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第63-64页 |
| 3.3.2.3 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的鸟氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第64-65页 |
| 3.3.2.4 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的降解途径关键酶活性的变 化 | 第65-66页 |
| 3.3.2.5 干旱胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢关键酶基因的表达情况 | 第66-68页 |
| 3.3.3 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发的烟草种子及幼苗脯氨酸含量及代谢关键酶活性的变化 | 第68-73页 |
| 3.3.3.1 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸含量的变化 | 第68页 |
| 3.3.3.2 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的谷氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第68-69页 |
| 3.3.3.3 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的鸟氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第69-70页 |
| 3.3.3.4 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的降解途径关键酶活性的变化 | 第70-71页 |
| 3.3.3.5 低温胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢关键酶基因的表达情况 | 第71-73页 |
| 3.3.4 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发烟草种子及幼苗的脯氨酸含量及代谢关键酶活性的变化 | 第73-80页 |
| 3.3.4.1 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸含量的变化 | 第73-74页 |
| 3.3.4.2 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的谷氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第74-75页 |
| 3.3.4.3 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的鸟氨酸合成途径关键酶活性的变化 | 第75-76页 |
| 3.3.4.4 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢的降解途径关键酶活性的变化 | 第76-77页 |
| 3.3.4.5 干旱+低温双重胁迫下 100 μmol·L-1SNP 引发脯氨酸代谢关键酶基因的表达情况 | 第77-80页 |
| 第4章 讨论 | 第80-85页 |
| 4.1 海藻糖引发对低温和干旱胁迫下烟草种子及幼苗抗逆性的影响 | 第80-81页 |
| 4.2 SNP 引发对低温和干旱胁迫下烟草种子及幼苗抗逆性的影响 | 第81-82页 |
| 4.3 脯氨酸代谢参与 SNP 引发提高烟草种子及幼苗在萌发初期抗旱性和抗冷性的影响 | 第82-84页 |
| 4.4 结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-95页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文和研究成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
