| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 縮写词 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 第一章 沙眼衣原体持续感染状态下STAT3-TLR2信号轴的活化 | 第15-29页 |
| 1. 前言 | 第15-16页 |
| 2 材料 | 第16-17页 |
| 2.1 细胞 | 第16页 |
| 2.2 菌株 | 第16页 |
| 2.3 主要试剂和试剂盒 | 第16页 |
| 2.4 主要仪器与设备 | 第16-17页 |
| 3. 方法 | 第17-22页 |
| 3.1 细胞培养 | 第17页 |
| 3.2 Ct的感染和增殖 | 第17页 |
| 3.3 Ct的滴度测定 | 第17页 |
| 3.4 吉姆萨染色 | 第17页 |
| 3.5 建立Ct不同感染模型 | 第17-18页 |
| 3.6 qRT-PCR检测基因的转录 | 第18-19页 |
| 3.7 ELISA检测细胞因子的分泌 | 第19-20页 |
| 3.8 Western blot检测蛋白的表达 | 第20-21页 |
| 3.9 统计分析 | 第21-22页 |
| 4. 结果 | 第22-26页 |
| 4.1 采用低浓度IFN-γ刺激建立Ct持续感染的HeLa细胞模型 | 第22页 |
| 4.2 Ct持续感染状态下TLR2、IL-6和STAT3的表达升高 | 第22-23页 |
| 4.3 Ct持续感染状态下TLR2的表达增加 | 第23-24页 |
| 4.4 Ct持续感染状态下IL-6、IL-1α的分泌升高 | 第24页 |
| 4.5 Ct持续感染状态下STAT3的表达与活化增加 | 第24-26页 |
| 5 讨论 | 第26-28页 |
| 6 结论 | 第28-29页 |
| 第二章 STAT3对沙眼衣原体持续感染状态下STAT3-TLR2信号轴的影响 | 第29-40页 |
| 1 前言 | 第29-30页 |
| 2 材料 | 第30-31页 |
| 2.1 细胞 | 第30页 |
| 2.2 菌株 | 第30页 |
| 2.3 试剂和试剂盒 | 第30-31页 |
| 3. 方法 | 第31-34页 |
| 3.1 质粒转化 | 第31页 |
| 3.2 质粒抽提 | 第31-32页 |
| 3.3 重组质粒的鉴定 | 第32页 |
| 3.4 STAT3基因沉默稳定HeLa细胞系的鉴定 | 第32页 |
| 3.5 利用稳定干扰HeLa细胞建立不同Ct感染模型 | 第32-33页 |
| 3.6 免疫印迹技术检测STAT3基因沉默后TLR2的表达 | 第33页 |
| 3.7 ELISA检测STAT3基因沉默后IL-6和IL-1α的分泌 | 第33页 |
| 3.8 统计分析 | 第33-34页 |
| 4 结果 | 第34-37页 |
| 4.1 STAT3干扰慢病毒载体测序结果 | 第34页 |
| 4.2 慢病毒转染HeLa细胞的转染效率 | 第34页 |
| 4.3 STAT3基因沉默稳定表达细胞系的沉默效果 | 第34-35页 |
| 4.4 STAT3干扰后,TLR2表达降低 | 第35页 |
| 4.5 STAT3干扰后,TLR2的基础表达 | 第35-36页 |
| 4.6 STAT3干扰后,IL-6和IL-1α分泌减少 | 第36-37页 |
| 5 讨论 | 第37-39页 |
| 6 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 综述 | 第43-55页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 攻读学位期间主要研究成果目录 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
