摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第12-28页 |
1.1 小麦雄性不育研究 | 第12-15页 |
1.1.1 小麦杂种优势利用 | 第13-14页 |
1.1.2 我国小麦光温敏雄性不育系的研究进展 | 第14-15页 |
1.2 小麦温敏型雄性不育系BNS的研究进展 | 第15-18页 |
1.2.1 BNS雄性不育形态结构特性 | 第15-16页 |
1.2.2 BNS的温光反应特性 | 第16页 |
1.2.3 BNS的细胞学研究 | 第16-17页 |
1.2.4 BNS的蛋白质组学研究进展 | 第17页 |
1.2.5 BNS育性基因的相关研究 | 第17-18页 |
1.2.6 BNS在转录表达水平上的研究 | 第18页 |
1.3 雄性不育育性基因经典定位方法 | 第18-22页 |
1.3.1 非整倍体法 | 第19页 |
1.3.2 分子标记法 | 第19-22页 |
1.4 分子标记技术在数量性状基因定位中的应用 | 第22-25页 |
1.4.1 创造作图群体 | 第23页 |
1.4.2 遗传连锁图的构建 | 第23-24页 |
1.4.3 QTL定位 | 第24-25页 |
1.4.4 分离群体分组分析法 | 第25页 |
1.5 课题研究的意义及技术路线 | 第25-28页 |
1.5.1 课题研究的意义 | 第25-26页 |
1.5.2 课题研究的技术路线 | 第26-28页 |
第二章 小麦BNS雄性不育遗传机制分析 | 第28-40页 |
2.1 材料与方法 | 第28-29页 |
2.1.1 供试材料 | 第28页 |
2.1.2 方法 | 第28-29页 |
2.2 结果与分析 | 第29-37页 |
2.2.1 BNS和郑麦366的自交结实率 | 第29-30页 |
2.2.2 BNS与普通小麦品种杂交F_1自交结实率 | 第30-31页 |
2.2.3 BNS核-质关系检测 | 第31-32页 |
2.2.4 BNS不育基因对数估计 | 第32-34页 |
2.2.5 BNS育性机制的遗传假定 | 第34-35页 |
2.2.6 BNS育性遗传机制验证 | 第35-37页 |
2.3 结论与讨论 | 第37-40页 |
2.3.1 BNS的不育类型 | 第37页 |
2.3.2 BNS不育与恢复的非等位互作遗传机制 | 第37-38页 |
2.3.3 BNS的不育基因数目 | 第38-40页 |
第三章 BNS不育基因的连锁标记和QTLs检测 | 第40-56页 |
3.1 材料和方法 | 第40-44页 |
3.1.1 作图群体 | 第40页 |
3.1.2 材料种植与表型数据调查 | 第40页 |
3.1.3 主要试剂及配制 | 第40-41页 |
3.1.4 实验方法 | 第41-44页 |
3.2 结果分析 | 第44-53页 |
3.2.1 F_2代作图群体特征 | 第44页 |
3.2.2 BSA池筛选多态性分子标记 | 第44-46页 |
3.2.3 BNS不育基因QTL检测和定位 | 第46-53页 |
3.3 讨论 | 第53-56页 |
3.3.1 BSA池筛选出12个连锁分子标记 | 第53-54页 |
3.3.2 F_2作图群体计算出3个QTLs位点 | 第54-56页 |
第四章 QTLs连锁标记的测序定位 | 第56-62页 |
4.1 材料与方法 | 第56页 |
4.2 结果分析 | 第56-60页 |
4.2.1 扩增片段的测序结果分析 | 第56页 |
4.2.2 测序片段与小麦基因组数据库比对 | 第56-59页 |
4.2.3 QTLs位点重新计算 | 第59-60页 |
4.3 讨论 | 第60-62页 |
4.3.1 24个PCR扩增片段序列比对结果 | 第60-61页 |
4.3.2 QTLs与遗传连锁图重建 | 第61-62页 |
第五章 全文结论及下一步工作计划 | 第62-64页 |
5.1 全文结论 | 第62-63页 |
5.1.1 小麦BNS雄性不育属是核遗传,且具显性不育特征 | 第62页 |
5.1.2 BNS主效不育基因有两对 | 第62页 |
5.1.3 检测到12个与不育基因连锁的SSR分子标记 | 第62-63页 |
5.1.4 连锁标记测序基因组定位及QTLs重新定位 | 第63页 |
5.2 下一步工作思路 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
致谢 | 第72-74页 |
攻读硕士期间发表的学术论文 | 第74页 |