| 摘要 | 第3-10页 |
| ABSTRACT | 第10-17页 |
| 引言 | 第23-26页 |
| 第一部分：重组质粒 pEGFP-N2/XPD转染条件的优化及 Pifithrin-α孵育条件的优化 | 第26-47页 |
| 1. 材料与方法 | 第26-41页 |
| 1.1 细胞株 | 第26页 |
| 1.2 质粒 | 第26页 |
| 1.3 主要仪器与设备 | 第26-27页 |
| 1.4 主要试剂 | 第27-28页 |
| 1.5 自配试剂 | 第28-31页 |
| 1.6 实验方法 | 第31-40页 |
| 1.7 MTT | 第40页 |
| 1.8 统计学方法 | 第40-41页 |
| 2. 结果 | 第41-45页 |
| 2.1 质粒转染浓度的优化 | 第41-42页 |
| 2.2 质粒转染后细胞孵育时间的优化 | 第42-44页 |
| 2.3 质粒转染效率的检测 | 第44页 |
| 2.4 Pifithrin–α孵育浓度的优化 | 第44页 |
| 2.5 Pifithrin–α孵育时间的优化 | 第44-45页 |
| 3. 讨论 | 第45-47页 |
| 第二部分：XPD通过 P53抑制乙型肝炎病毒的复制 | 第47-60页 |
| 1. 材料与方法 | 第49-54页 |
| 1.1 细胞株 | 第49页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第49页 |
| 1.3 主要试剂 | 第49-50页 |
| 1.4 自配试剂 | 第50-51页 |
| 1.5 实验方法 | 第51-54页 |
| 2. 结果 | 第54-58页 |
| 2.1 XPD和P53对HBsAg、HBeAg mRNA表达的影响 | 第54-56页 |
| 2.2 XPD和P53对培养上清液中HBsAg和HBeAg含量的影响 | 第56-57页 |
| 2.3 XPD和P53对培养上清液中HBV-DNA含量的影响 | 第57-58页 |
| 3.讨论 | 第58-60页 |
| 第三部分 XPD 通过 P53 抑制肝癌的增殖 | 第60-68页 |
| 1. 材料与方法 | 第62-64页 |
| 1.1 细胞株 | 第62页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第62页 |
| 1.3 主要试剂 | 第62-63页 |
| 1.4 自配试剂 | 第63页 |
| 1.5 实验方法 | 第63-64页 |
| 2. 结果 | 第64-65页 |
| 2.1 XPD和P53对细胞增殖活力的影响 | 第64-65页 |
| 2.2 XPD和P53对细胞周期的影响 | 第65页 |
| 2.3 XPD和P53对细胞凋亡率的影响 | 第65页 |
| 3. 讨论 | 第65-68页 |
| 第四部分：XPD通过P53抑制HBx的表达 | 第68-83页 |
| 1. 材料与方法 | 第71-76页 |
| 1.1 细胞株 | 第71页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第71页 |
| 1.3 主要试剂 | 第71-72页 |
| 1.4 自配试剂 | 第72-76页 |
| 1.5 实验方法 | 第76页 |
| 2. 结果 | 第76-80页 |
| 2.1 XPD和P53对HBx、P21、Bax和Bcl-2 mRNA表达的影响 | 第76-78页 |
| 2.2 XPD和P53对HBx、P21、Bax和Bcl-2蛋白表达的影响 | 第78-80页 |
| 3. 讨论 | 第80-83页 |
| 全文总结 | 第83-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 附图 | 第94-97页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第97-98页 |
| 综述 | 第98-103页 |
| 参考文献 | 第101-103页 |
| 已发表的与本论文相关的文章 | 第103-105页 |
