缩略语表 | 第6-10页 |
中文摘要 | 第10-13页 |
ABSTRACT | 第13-16页 |
前言 | 第17-19页 |
文献回顾 | 第19-36页 |
第一部分 ~(188)RE-PEG-(GX1)_2 的制备及用于胃癌的SPECT成像和治疗研究 | 第36-74页 |
引言 | 第36-37页 |
1 材料 | 第37-40页 |
1.1 试剂和耗材 | 第37-39页 |
1.2 仪器设备 | 第39-40页 |
1.3 细胞株、脐带和实验动物 | 第40页 |
2 方法 | 第40-52页 |
2.1 细胞的培养、冻存及复苏 | 第40-42页 |
2.2 HUVECs的分离培养及鉴定 | 第42-43页 |
2.3 Co-HUVECs细胞模型的建立 | 第43-44页 |
2.4 胃癌裸鼠皮下模型的建立 | 第44页 |
2.5 探针的制备及鉴定 | 第44-45页 |
2.6 体外细胞结合实验及竞争性抑制分析 | 第45-47页 |
2.7 荷瘤裸鼠的SPECT成像 | 第47页 |
2.8 MTT分析观察探针对细胞增殖的影响 | 第47-48页 |
2.9 流式细胞术观察探针对细胞凋亡的影响 | 第48页 |
2.10 BLI观察药物在体对荷瘤裸鼠的治疗作用 | 第48-49页 |
2.11 离体肿瘤组织的切片染色 | 第49-51页 |
2.11.1 CD31染色判断肿瘤MVD | 第49-50页 |
2.11.2 Ki67染色判断肿瘤增殖情况 | 第50-51页 |
2.11.3 TUNEL分析判断肿瘤细胞凋亡情况 | 第51页 |
2.12 药物副作用的观察 | 第51-52页 |
3 结果 | 第52-68页 |
3.1 HUVECs的鉴定 | 第52-53页 |
3.2 探针的制备及鉴定 | 第53-56页 |
3.3 体外细胞结合实验及竞争性抑制分析 | 第56-57页 |
3.4 ~(188)Re-PEG-(GX1)_2 具有更强的体内靶向性 | 第57-58页 |
3.5 ~(188)Re-PEG-(GX1)_2 可明显抑制Co-HUVECs的增殖 | 第58-59页 |
3.6 ~(188)Re-PEG-(GX1)_2 可诱导Co-HUVECs的凋亡 | 第59-60页 |
3.7 ~(188)Re-PEG-(GX1)_2 体内可抑制肿瘤的生长 | 第60-62页 |
3.8 离体肿瘤组织的切片染色 | 第62-66页 |
3.8.1 CD31染色计数肿瘤MVD | 第62-64页 |
3.8.2 Ki67染色观察肿瘤增殖情况 | 第64页 |
3.8.3 TUNEL分析观察肿瘤凋亡情况 | 第64-66页 |
3.9 药物对正常器官毒副作用的观察 | 第66-68页 |
3.9.1 生化分析判断药物对肝肾功能的影响 | 第66页 |
3.9.2 HE染色观察有无脏器的损伤 | 第66-68页 |
4 讨论 | 第68-74页 |
第二部分 ~(68)GA-DOTA-KEK-(GX1)_2 的制备及用于胃癌的PET成像研究 | 第74-98页 |
引言 | 第74页 |
1 材料 | 第74-78页 |
1.1 试剂和耗材 | 第74-76页 |
1.2 仪器设备 | 第76-77页 |
1.3 细胞株、脐带和实验动物 | 第77-78页 |
2 方法 | 第78-85页 |
2.1 细胞的培养、冻存及复苏 | 第78-79页 |
2.2 HUVECs的分离培养及鉴定 | 第79页 |
2.3 Co-HUVECs细胞模型的建立 | 第79页 |
2.4 胃癌裸鼠皮下模型的建立 | 第79-80页 |
2.5 探针的制备及鉴定 | 第80-81页 |
2.6 细胞免疫荧光 | 第81-82页 |
2.7 体外细胞结合实验及竞争性抑制分析 | 第82-83页 |
2.8 细胞摄取与外排实验 | 第83-85页 |
2.9 荷瘤裸鼠的Nano PET/CT成像 | 第85页 |
2.10 生物学分布 | 第85页 |
3 结果 | 第85-95页 |
3.1 HUVECs的鉴定 | 第86页 |
3.2 探针的制备及鉴定 | 第86-89页 |
3.3 细胞免疫荧光 | 第89页 |
3.4 体外细胞结合实验及竞争性抑制分析 | 第89-91页 |
3.5 细胞摄取及外排实验 | 第91-93页 |
3.6 ~(68)Ga-DOTA-KEK-(GX1)_2 在体具有良好的胃癌靶向性 | 第93页 |
3.7 生物学分布 | 第93-95页 |
4 讨论 | 第95-98页 |
小结 | 第98-99页 |
参考文献 | 第99-126页 |
附录 | 第126-143页 |
个人简历和研究成果 | 第143-145页 |
致谢 | 第145-146页 |