| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 功能核酸概述 | 第11-20页 |
| 1.1.1 功能核酸的分类 | 第11-16页 |
| 1.1.2 功能核酸的应用 | 第16-18页 |
| 1.1.3 天然功能核酸在实际应用中存在的问题及解决办法 | 第18-20页 |
| 1.2 L型功能核酸的研究 | 第20-21页 |
| 1.3 金属离子和小分子目标物的传感检测 | 第21-23页 |
| 1.3.1 具有生物意义的金属离子和小分子化合物 | 第21-22页 |
| 1.3.2 功能核酸在金属离子与小分子化合物检测中的应用 | 第22-23页 |
| 1.4 荧光传感器概述 | 第23-24页 |
| 1.5 本论文的研究工作 | 第24-26页 |
| 第2章 基于L-DNAzyme的荧光传感器用于复杂生物样品中的Cu~(2+)检测 | 第26-39页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-29页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 DNA合成 | 第27-28页 |
| 2.2.3 圆二色光谱表征 | 第28页 |
| 2.2.4 荧光检测 | 第28页 |
| 2.2.5 凝胶电泳 | 第28-29页 |
| 2.2.6 细胞培养、转染和共聚焦成像 | 第29页 |
| 2.2.7 共聚焦荧光成像 | 第29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-37页 |
| 2.3.1 Cu~(2+)传感器的设计 | 第29-30页 |
| 2.3.2 圆二色光谱及热动力学表征 | 第30-31页 |
| 2.3.3 基于L-DNAzyme荧光传感器的催化活性表征 | 第31-32页 |
| 2.3.4 L型Cu~(2+)传感器用于缓冲液中的Cu~(2+)检测 | 第32-34页 |
| 2.3.5 L-DNAzyme的抗核酸酶降解能力 | 第34页 |
| 2.3.6 L-DNAzyme的抗蛋白与核酸干扰能力 | 第34-36页 |
| 2.3.7 L-DNAzyme在胎牛血清中对Cu~(2+)的检测 | 第36页 |
| 2.3.8 L-DNAzyme在活细胞中对Cu~(2+)的成像 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-39页 |
| 第3章 L-Aptamer用于小分子目标物检测荧光传感平台的构建 | 第39-51页 |
| 3.1 引言 | 第39-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-43页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 圆二色谱表征 | 第42页 |
| 3.2.3 荧光分析检测 | 第42页 |
| 3.2.4 荧光偏振检测 | 第42页 |
| 3.2.5 凝胶电泳 | 第42-43页 |
| 3.2.6 鱼组织提取液样品的缓冲液制备 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-49页 |
| 3.3.1 圆二色光谱表征 | 第43-44页 |
| 3.3.2 L-EA Aptamer与EA结合能力的验证 | 第44-45页 |
| 3.3.3 L-EA Aptamer的生物稳定性 | 第45页 |
| 3.3.4 L-EA Aptamer的抗干扰能力验证 | 第45-47页 |
| 3.3.5 L-MGA与MG结合能力的验证 | 第47页 |
| 3.3.6 L-MGA的生物稳定性验证 | 第47-48页 |
| 3.3.7 L-MGA在实际样品中MG检测 | 第48-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-65页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
