| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 0 前言 | 第15-29页 |
| 0.1 贝类与海参概述 | 第15-17页 |
| 0.1.1 海洋贝类简介 | 第15-16页 |
| 0.1.2 海洋贝类的工业加工方式 | 第16页 |
| 0.1.3 冰岛刺参简介 | 第16-17页 |
| 0.2 醚型和缩醛型磷脂概述 | 第17-19页 |
| 0.2.1 醚磷脂和缩醛磷脂的分子结构 | 第17-18页 |
| 0.2.2 缩醛磷脂的来源 | 第18页 |
| 0.2.3 缩醛磷脂的生物活性 | 第18-19页 |
| 0.3 缩醛磷脂的提取与分离纯化 | 第19-21页 |
| 0.3.1 磷脂的提取 | 第19-20页 |
| 0.3.2 缩醛磷脂的碱法制备 | 第20页 |
| 0.3.3 缩醛磷脂的酶法制备 | 第20-21页 |
| 0.4 缩醛磷脂的定性及定量分析 | 第21-24页 |
| 0.4.1 薄层色谱层析分析法 | 第21-22页 |
| 0.4.2 碘消比色法 | 第22页 |
| 0.4.3 气相色谱与质谱联用法 | 第22-23页 |
| 0.4.4 液相色谱与质谱联用法 | 第23-24页 |
| 0.5 本研究的目的与意义 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 1 海洋中6种贝类的磷脂含量及分子种组成分析 | 第29-42页 |
| 1.1 材料和仪器 | 第29-30页 |
| 1.1.1 实验原料 | 第29页 |
| 1.1.2 试剂和材料 | 第29页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 1.2.1 样品总脂提取 | 第30页 |
| 1.2.2 总脂含量测定 | 第30页 |
| 1.2.3 钼蓝比色法测定总磷脂含量 | 第30-31页 |
| 1.2.4 LC-MS/MS法测定磷脂分子种组成 | 第31页 |
| 1.2.5 主成分分析 | 第31页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第31-39页 |
| 1.3.1 6种贝类中的磷脂含量 | 第31-32页 |
| 1.3.2 6种贝类的磷脂结构分析及分子种组成 | 第32-38页 |
| 1.3.3 PCA分析6种贝类中磷脂分子种的差异 | 第38-39页 |
| 1.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-42页 |
| 2 海洋水产品中缩醛磷脂的加工变化分析及其分离纯化 | 第42-66页 |
| 2.1 加工过程中贻贝脂质变化及缩醛磷脂的含量变化 | 第42-53页 |
| 2.1.1 材料和仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.1.1 实验原料 | 第42页 |
| 2.1.1.2 试剂和材料 | 第42页 |
| 2.1.1.3 主要仪器设备 | 第42-43页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 2.1.2.1 原料的加工处理 | 第43页 |
| 2.1.2.2 总脂提取及含量测定 | 第43页 |
| 2.1.2.3 样品分离纯化及衍生处理 | 第43-44页 |
| 2.1.2.4 钼蓝比色法测定总磷脂含量 | 第44页 |
| 2.1.2.5 铜皂比色法测定游离脂肪酸含量 | 第44页 |
| 2.1.2.6 TBARS值测定 | 第44页 |
| 2.1.2.7 GC-MS法测定脂肪酸及脂肪醛二甲基缩醛组成 | 第44页 |
| 2.1.2.8 主成分分析 | 第44-45页 |
| 2.1.3 结果与讨论 | 第45-53页 |
| 2.1.3.1 总游离脂肪酸及总磷脂的含量变化 | 第45页 |
| 2.1.3.2 不同加工方式后TBARS值变化 | 第45-46页 |
| 2.1.3.3 总磷脂中脂肪酸组成及缩醛磷脂的含量变化 | 第46-49页 |
| 2.1.3.4 PC中脂肪酸组成及缩醛磷脂的含量变化 | 第49-50页 |
| 2.1.3.5 PE中脂肪酸组成及缩醛磷脂的含量变化 | 第50-51页 |
| 2.1.3.6 PCA分析 | 第51-53页 |
| 2.2 磷脂酶A1水解法富集贻贝中的缩醛磷脂 | 第53-57页 |
| 2.2.1 材料和仪器 | 第53页 |
| 2.2.1.1 实验原料 | 第53页 |
| 2.2.1.2 试剂和材料 | 第53页 |
| 2.2.1.3 主要仪器设备 | 第53页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第53-54页 |
| 2.2.2.1 总脂的提取 | 第53页 |
| 2.2.2.2 酶法水解富集缩醛磷脂及醚磷脂 | 第53-54页 |
| 2.2.2.3 质谱法分析缩酸憐脂的纯度 | 第54页 |
| 2.2.3 结果与讨论 | 第54-57页 |
| 2.2.3.1 磷脂酶A1水解法富集缩醛磷脂最佳反应条件 | 第54-56页 |
| 2.2.3.2 磷脂酶A1水解法富集醚磷脂的最佳反应条件 | 第56-57页 |
| 2.3 柱层析法分离纯化冰岛刺参中的缩醛磷脂 | 第57-62页 |
| 2.3.1 材料和仪器 | 第57-58页 |
| 2.3.1.1 实验原料 | 第57页 |
| 2.3.1.2 试剂和材料 | 第57页 |
| 2.3.1.3 主要仪器设备 | 第57-58页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第58-59页 |
| 2.3.2.1 总脂的提取 | 第58页 |
| 2.3.2.2 冷丙酮沉淀与硅胶柱层析纯化磷脂 | 第58页 |
| 2.3.2.3 硅胶柱层析分离得到磷脂中PE、PC | 第58页 |
| 2.3.2.4 二醇基柱层析纯化缩醛磷脂 | 第58-59页 |
| 2.3.2.5 TLC法分析 | 第59页 |
| 2.3.2.6 直接进样质谱法测定缩醛磷脂的纯度 | 第59页 |
| 2.3.3 结果与讨论 | 第59-62页 |
| 2.3.3.1 冷丙酮沉淀法与硅胶柱层析法纯化磷脂最佳洗脱条件 | 第59-60页 |
| 2.3.3.2 硅胶柱层析法分离得到磷脂中PE、PC方法优化 | 第60-62页 |
| 2.3.3.3 二醇基柱层析纯化缩醛磷脂洗脱条件初探 | 第62页 |
| 2.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-66页 |
| 3 海洋水产品中缩醛磷脂的体外抗氧化活性探究 | 第66-76页 |
| 3.1 海洋水产品中缩醛磷脂对H_2O_2诱导PC12细胞氧化损伤的保护作用 | 第66-71页 |
| 3.1.1 材料和仪器 | 第66-67页 |
| 3.1.1.1 受试样品 | 第66页 |
| 3.1.1.2 细胞株与试剂 | 第66页 |
| 3.1.1.3 主要仪器设备 | 第66-67页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第67-68页 |
| 3.1.2.1 受试物溶液的制备 | 第67页 |
| 3.1.2.2 PC12细胞经H_2O_2诱导氧化损伤处理 | 第67页 |
| 3.1.2.3 MTT法检测受试物的抗氧化效果 | 第67页 |
| 3.1.2.4 细施T-AOC、SOD活性的测定 | 第67页 |
| 3.1.2.5 细胞ROS水平测定 | 第67-68页 |
| 3.1.2.6 统计学分析 | 第68页 |
| 3.1.3 结果与讨论 | 第68-71页 |
| 3.1.3.1 受试物对正常PC12细胞的影响 | 第68页 |
| 3.1.3.2 H_2O_2对PC12细胞存活率的影响 | 第68-69页 |
| 3.1.3.3 缩醛磷脂对H_2O_2诱导细胞氧化损伤细胞存活率影响 | 第69页 |
| 3.1.3.4 缩醛磷脂对氧化损伤的细胞LDH释放量的影响 | 第69-70页 |
| 3.1.3.5 受试物对ROS、T-AOC水平及SOD活性的影响 | 第70-71页 |
| 3.2 缩醛磷脂的体外消化生物可接受率 | 第71-74页 |
| 3.2.1 材料和仪器 | 第71-72页 |
| 3.2.1.1 实验原料 | 第71页 |
| 3.2.1.2 试剂和材料 | 第71页 |
| 3.2.1.3 主要仪器设备 | 第71-72页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第72-73页 |
| 3.2.2.1 体外模拟缩醛磷脂溶液配制 | 第72页 |
| 3.2.2.2 体外模拟消化吸收 | 第72-73页 |
| 3.2.2.3 生物可接受率计算 | 第73页 |
| 3.2.3 结果与讨论 | 第73-74页 |
| 3.3 本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-76页 |
| 4 总结 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-83页 |
| 论文创新点 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 个人简历 | 第85-86页 |
| 硕士在读期间发表的学术论文 | 第86页 |
