亚麻高效再生体系优化及抗除草剂bar基因的遗传转化研究
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第一章 绪论 | 第11-19页 |
·亚麻组织培养研究进展 | 第11-12页 |
·影响亚麻组培再生的因素 | 第12-14页 |
·基因型 | 第12页 |
·生理年龄 | 第12-13页 |
·外植体的来源 | 第13页 |
·培养基 | 第13-14页 |
·光照 | 第14页 |
·农杆菌介导亚麻遗传转化研究进展 | 第14-15页 |
·影响农杆菌介导亚麻遗传转化的因素 | 第15-17页 |
·农杆菌菌株对转化的影响 | 第15页 |
·浸染浓度与浸染时间对转化的影响 | 第15-16页 |
·预培养对转化的影响 | 第16页 |
·共培养时间对转化的影响 | 第16页 |
·乙酰丁香酮与芥子酸对转化的影响 | 第16-17页 |
·抗除草剂转基因作物研究进展 | 第17-18页 |
·研究的目的和意义 | 第18-19页 |
第二章 亚麻组织培养再生体系的优化 | 第19-31页 |
·试验材料 | 第19页 |
·植物材料 | 第19页 |
·仪器 | 第19页 |
·植物激素 | 第19页 |
·基本培养基 | 第19页 |
·试验方法 | 第19-22页 |
·基本培养基及配制方法 | 第19-20页 |
·培养条件 | 第20页 |
·观察与统计方法 | 第20-21页 |
·种子消毒及无菌苗的获得 | 第21页 |
·外植体的准备 | 第21页 |
·不同基因型对下胚轴再生能力的影响 | 第21页 |
·愈伤组织的诱导与分化 | 第21页 |
·不定芽的伸长 | 第21-22页 |
·根的诱导和再生苗移栽 | 第22页 |
·结果与分析 | 第22-29页 |
·乙醇和升汞处理时间对种子消毒的影响 | 第22-23页 |
·下胚轴不同部位对愈伤组织诱导及分化的影响 | 第23-24页 |
·最适基本培养基的确定 | 第24-25页 |
·最适愈伤组织诱导与分化培养基的筛选 | 第25-26页 |
·最适生根培养基的确定 | 第26页 |
·不同基因型下胚轴再生能力的比较 | 第26-29页 |
·讨论 | 第29-31页 |
·关于无菌苗的获得与外植体的选择 | 第29页 |
·关于基本培养基与植物生长调节剂的选择 | 第29-30页 |
·关于组织培养中污染的类型及处理方法 | 第30-31页 |
第三章 农杆菌介导的抗除草剂BAR基因的遗传转化 | 第31-51页 |
·试验材料 | 第31-33页 |
·植物材料 | 第31页 |
·菌株和质粒载体 | 第31页 |
·菌种培养基 | 第31-32页 |
·植物培养基 | 第32页 |
·主要试剂 | 第32页 |
·溶液配制 | 第32-33页 |
·主要试验仪器 | 第33页 |
·试验方法 | 第33-39页 |
·载体质粒的转化和提取 | 第33-35页 |
·亚麻遗传转化适宜筛选条件的研究 | 第35页 |
·脱菌抗生素的敏感性试验 | 第35-36页 |
·农杆菌介导遗传转化基本步骤 | 第36页 |
·农杆菌介导转化亚麻主要影响因子的研究 | 第36-37页 |
·转基因植株的检测 | 第37-39页 |
·结果与分析 | 第39-49页 |
·质粒的酶切鉴定及菌落PCR 检测 | 第39-40页 |
·亚麻遗传转化适宜筛选条件的研究 | 第40-42页 |
·脱菌抗生素的敏感性试验 | 第42-43页 |
·影响转化效率因素的优化 | 第43-48页 |
·转基因植株的检测 | 第48-49页 |
·讨论 | 第49-51页 |
·筛选剂与农杆菌抑菌剂对亚麻转化的影响 | 第49-50页 |
·根癌农杆菌介导亚麻遗传转化的参数优化 | 第50页 |
·关于GUS染色结果的讨论 | 第50-51页 |
第四章 全文结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
作者简历 | 第58页 |