摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第1章 前言 | 第14-35页 |
1.1 研究目的及意义 | 第14-15页 |
1.2 生物分离方法在植物生物活性成分精制纯化中的应用 | 第15-17页 |
1.3 柿属植物主要有效成分的生物活性及应用 | 第17-18页 |
1.3.1 酚类化合物 | 第17-18页 |
1.3.2 多糖类化合物 | 第18页 |
1.4 ROU诱发因素 | 第18-20页 |
1.4.1 免疫因素 | 第19页 |
1.4.2 感染因素 | 第19页 |
1.4.3 遗传因素 | 第19-20页 |
1.4.4 心理因素 | 第20页 |
1.4.5 营养元素 | 第20页 |
1.4.6 药物因素 | 第20页 |
1.5 ROU免疫系统损伤机制研究 | 第20-23页 |
1.5.1 T细胞亚群功能异常 | 第20-22页 |
1.5.2 细胞因子异常 | 第22-23页 |
1.6 ROU与自身免疫病 | 第23-24页 |
1.7 自身免疫病的免疫系统损伤机制研究 | 第24-29页 |
1.7.1 T细胞亚群功能异常 | 第24-27页 |
1.7.2 细胞因子异常 | 第27-28页 |
1.7.3 固有免疫异常 | 第28-29页 |
1.8 ROU的诊断和防治 | 第29-31页 |
1.9 拟解决的主要问题 | 第31-32页 |
1.10 研究内容与技术路线 | 第32-35页 |
1.10.1 研究内容 | 第32-33页 |
1.10.2 技术路线 | 第33-35页 |
第2章 柿属植物中酚类、总多糖提取物的分离纯化 | 第35-54页 |
2.1 材料与方法 | 第35-40页 |
2.1.1 试验材料 | 第35-36页 |
2.1.2 试验方法 | 第36-40页 |
2.2 结果与分析 | 第40-53页 |
2.2.1 柿叶、柿果中酚类、多糖组分含量对比 | 第40-41页 |
2.2.2 TPDPPL的EtOH/(NH_4)_2SO_4双水相系统纯化研究 | 第41-47页 |
2.2.3 TPsPF的酶法脱蛋白工艺研究 | 第47-49页 |
2.2.4 TPsPF超滤膜纯化研究 | 第49-52页 |
2.2.5 TPsPF在精制纯化各个阶段的得率、除杂及损耗分析 | 第52-53页 |
2.3 小结 | 第53-54页 |
第3章 Th17、CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg与自身抗原致复发ROU的SD大鼠发病之间的关联 | 第54-68页 |
3.1 材料与方法 | 第54-58页 |
3.1.1 试验材料 | 第54-55页 |
3.1.2 试验方法 | 第55-58页 |
3.2 结果与分析 | 第58-65页 |
3.2.1 自身抗原致复发ROU的SD大鼠的建模情况 | 第58页 |
3.2.2 自身抗原致复发ROU的SD大鼠模型的组织病理学分析 | 第58-59页 |
3.2.3 MODEL组和CTRL组外周血Th1、Th2相关细胞因子水平的对比分析 | 第59-60页 |
3.2.4 MODEL组和CTRL组外周血Th17、CD4~+CD25+~oxp3~+Treg相关细胞因子水平对比分析 | 第60-62页 |
3.2.5 MODEL组和CTRL组外周血CD4~+CD25~+oxp3~+Treg的分化对比 | 第62页 |
3.2.6 MODEL组和CTRL组病变组织转录因子Foxp3、RORγt的表达对比 | 第62-64页 |
3.2.7 MODEL组外周血TGF-β1、IL-17在溃疡前后的动态变化 | 第64-65页 |
3.3 小结 | 第65-68页 |
第4章 TPsPF对自身抗原致复发ROU的SD大鼠模型作用及对LPS体外诱导巨噬细胞的影响 | 第68-85页 |
4.1 材料与方法 | 第68-72页 |
4.1.1 试验材料 | 第68-70页 |
4.1.2 试验方法 | 第70-72页 |
4.2 结果与分析 | 第72-83页 |
4.2.1 疗效评价 | 第72-73页 |
4.2.2 组织病理学分析 | 第73页 |
4.2.3 TPsPF对ROU大鼠外周血Th17、CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg相关细胞因子水平的影响 | 第73-75页 |
4.2.4 TPsPF对ROU大鼠外周血CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞分化的影响 | 第75-77页 |
4.2.5 TPsPF对ROU大鼠病变组织转录因子Foxp3、RORγt表达的影响 | 第77-79页 |
4.2.6 TPsPF对LPS体外诱导RAW264.7小鼠巨噬细胞相对活力的影响 | 第79页 |
4.2.7 TPsPF对LPS体外诱导RAW264.7小鼠巨噬细胞产生NO、IL-6的影响 | 第79-81页 |
4.2.8 TPsPF对LPS体外诱导RAW264.7小鼠巨噬细胞TLR4、iNOS基因表达的影响 | 第81页 |
4.2.9 TPsPF对LPS体外诱导RAW264.7小鼠巨噬细胞IκBa、NF-κB p65蛋白表达的影响 | 第81-83页 |
4.3 小结 | 第83-85页 |
第5章 TPDPPL对1%HCL致单相ROU的SD大鼠模型及相关作用考察 | 第85-96页 |
5.1 材料与方法 | 第85-88页 |
5.1.1 试验材料 | 第85-86页 |
5.1.2 试验方法 | 第86-88页 |
5.2 结果与分析 | 第88-94页 |
5.2.1 TPDPPL对1%HCL致单相ROU的SD大鼠模型作用的考察 | 第88-92页 |
5.2.2 TPDPPL抗炎、镇痛药理作用初步考察 | 第92-94页 |
5.3 小结 | 第94-96页 |
第6章 讨论 | 第96-106页 |
6.1 生物分离方法在医药、健康产品等领域中的重要性日益突出 | 第96-97页 |
6.2 1%HCL注射致单相ROU的动物模型更加接近于创伤性溃疡动物模型 | 第97-98页 |
6.3 自身免疫致复发ROU的SD大鼠模型已经比较接近临床 | 第98-99页 |
6.4 Th17、CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞在ADs及ROU发病中发挥重要作用 | 第99-101页 |
6.5 CD4~+T细胞亚群及相关细胞因子在ADs及ROU发病中发挥重要作用 | 第101-102页 |
6.6 多糖成分通过TLR4/NF-κB信号转导途径参与ADs及ROU抗炎 | 第102-104页 |
6.7 META-analyse和网络药理学应用于ADs及ROU的前景分析 | 第104-106页 |
主要创新点 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-133页 |
附录 | 第133-135页 |
致谢 | 第135-137页 |
作者简历 | 第137-138页 |